| 致谢 | 第6-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 拉丁字母符号表 | 第14-15页 |
| 缩略语表 | 第15-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-30页 |
| 1.1 引言 | 第16-17页 |
| 1.2 抗体及动物细胞培养 | 第17-24页 |
| 1.2.1 抗体结构与功能 | 第17-18页 |
| 1.2.2 单抗的分离方法 | 第18-22页 |
| 1.2.3 单抗的层析分离方法 | 第22-24页 |
| 1.3 疏水性电荷诱导层析 | 第24-29页 |
| 1.3.1 原理与特点 | 第24-27页 |
| 1.3.2 HCIC分离单抗 | 第27-29页 |
| 1.4 本文研究思路 | 第29-30页 |
| 第二章 MEP HyperCel层析分离抗HER2单抗 | 第30-44页 |
| 2.1 引言 | 第30-31页 |
| 2.2 材料和方法 | 第31-35页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第31页 |
| 2.2.2 含抗HER2单抗的细胞培养上清液制备 | 第31-32页 |
| 2.2.3 料液稳定性测定 | 第32页 |
| 2.2.4 静态吸附测定 | 第32-33页 |
| 2.2.5 动态载量测定 | 第33页 |
| 2.2.6 MEP HyperCel层析分离抗HER2单抗 | 第33-34页 |
| 2.2.7 分析方法 | 第34-35页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第35-43页 |
| 2.3.1 单抗料液稳定性 | 第35-36页 |
| 2.3.2 单抗静态吸附性能 | 第36-37页 |
| 2.3.3 单抗穿透曲线 | 第37-38页 |
| 2.3.4 层析洗脱条件优化 | 第38-41页 |
| 2.3.5 抗HER2单抗分离纯化 | 第41-43页 |
| 2.4 本章小结 | 第43-44页 |
| 第三章 ABI和MEP HyperCel层析分离抗IL-12/23单抗 | 第44-66页 |
| 3.1 引言 | 第44-45页 |
| 3.2 材料和方法 | 第45-48页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第45页 |
| 3.2.2 含抗IL-12/23单抗的细胞培养上清液制备 | 第45-46页 |
| 3.2.3 静态吸附测定 | 第46页 |
| 3.2.4 动态载量测定 | 第46页 |
| 3.2.5 洗脱条件优化 | 第46-47页 |
| 3.2.6 上样条件优化 | 第47页 |
| 3.2.7 分离过程验证 | 第47页 |
| 3.2.8 单抗的纯度和收率 | 第47-48页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第48-65页 |
| 3.3.1 静态吸附性能比较 | 第48-51页 |
| 3.3.2 动态载量比较 | 第51-53页 |
| 3.3.3 洗脱条件优化 | 第53-56页 |
| 3.3.4 上样条件优化 | 第56-63页 |
| 3.3.5 分离过程验证 | 第63-65页 |
| 3.4 本章小结 | 第65-66页 |
| 第四章 双功能配基W-ABI层析分离抗IL-12/23单抗 | 第66-78页 |
| 4.1 引言 | 第66-67页 |
| 4.2 材料和方法 | 第67-69页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第67页 |
| 4.2.2 含抗IL-12/23单抗的细胞培养上清液制备 | 第67页 |
| 4.2.3 吸附等温点 | 第67页 |
| 4.2.4 动态载量测定 | 第67-68页 |
| 4.2.5 分离条件优化 | 第68页 |
| 4.2.6 介质稳定性验证 | 第68页 |
| 4.2.7 分析方法 | 第68页 |
| 4.2.8 CHO宿主细胞蛋白(HCP)测定 | 第68-69页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第69-77页 |
| 4.3.1 静态吸附性能 | 第69-70页 |
| 4.3.2 动态载量 | 第70-71页 |
| 4.3.3 分离条件优化 | 第71-73页 |
| 4.3.4 分离过程验证 | 第73-75页 |
| 4.3.5 不同介质的分离效果比较 | 第75-76页 |
| 4.3.6 CHO宿主细胞蛋白分析 | 第76-77页 |
| 4.4 本章小结 | 第77-78页 |
| 第五章 结论与展望 | 第78-82页 |
| 5.1 结论 | 第78-79页 |
| 5.2 展望 | 第79-82页 |
| 参考文献 | 第82-92页 |
| 作者简介 | 第92页 |
