| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略词表 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-52页 |
| 1.1 T细胞的分类和功能 | 第11-16页 |
| 1.1.1 T细胞对抗原的应答状态 | 第11-12页 |
| 1.1.2 T细胞表面的特异性受体 | 第12-13页 |
| 1.1.3 T细胞的表面标志及功能分类 | 第13-16页 |
| 1.2 T细胞受体多样性的产生机制 | 第16-20页 |
| 1.2.1 T细胞受体的基本结构 | 第16-17页 |
| 1.2.2 T细胞受体的基因结构 | 第17-18页 |
| 1.2.3 T细胞受体的V(D)J重组过程 | 第18-20页 |
| 1.3 脊椎动物T细胞受体基因的进化 | 第20-51页 |
| 1.3.1 后口动物免疫系统的进化 | 第20-22页 |
| 1.3.2 有颌类脊椎动物的进化 | 第22-23页 |
| 1.3.3 TCRβ基因的进化 | 第23-31页 |
| 1.3.4 TCRγ基因的进化 | 第31-38页 |
| 1.3.5 TCRα/δ基因的进化 | 第38-46页 |
| 1.3.6 NAR-TCR、VHδ和TCRμ基因 | 第46-51页 |
| 1.4 研究目的和意义 | 第51-52页 |
| 第二章 材料和方法 | 第52-65页 |
| 2.1 技术路线 | 第52-53页 |
| 2.2 实验材料 | 第53-54页 |
| 2.2.1 实验样本 | 第53页 |
| 2.2.2 质粒与菌株 | 第53页 |
| 2.2.3 扬子鳄基因组BAC文库 | 第53页 |
| 2.2.4 分子生物学实验所用试剂及试剂盒 | 第53-54页 |
| 2.2.5 主要试剂配制 | 第54页 |
| 2.2.6 实验所用引物 | 第54页 |
| 2.3 实验仪器及设备 | 第54-55页 |
| 2.4 实验方法 | 第55-64页 |
| 2.4.1 基因组DNA的提取 | 第55-56页 |
| 2.4.2 组织总RNA的提取 | 第56-57页 |
| 2.4.3 反转录(M-MLV) | 第57页 |
| 2.4.4 5'RACE实验方法 | 第57-58页 |
| 2.4.5 3'RACE实验方法 | 第58页 |
| 2.4.6 常规PCR反应体系及反应条件 | 第58-59页 |
| 2.4.7 高保真PCR反应 | 第59页 |
| 2.4.8 T-A克隆 | 第59-60页 |
| 2.4.9 定量PCR实验方法 | 第60-61页 |
| 2.4.10 Southern blotting实验方法(地高辛标记杂交方法) | 第61-63页 |
| 2.4.11 扬子鳄BAC文库筛选方法 | 第63-64页 |
| 2.5 生物信息学分析所用分析软件及网址 | 第64-65页 |
| 第三章 实验结果和分析 | 第65-152页 |
| 3.1 扬子鳄TCRβ基因的结构与表达 | 第65-87页 |
| 3.1.1 TCRβ基因的结构特点 | 第65-75页 |
| 3.1.2 TCRβ基因的表达特点 | 第75-87页 |
| 3.2 扬子鳄TCRγ基因的结构与表达 | 第87-104页 |
| 3.2.1 TCRγ基因的结构特点 | 第87-97页 |
| 3.2.2 TCRγ基因的表达特点 | 第97-104页 |
| 3.3 扬子鳄TCRα/δ基因的结构与表达 | 第104-152页 |
| 3.3.1 TCRα/δ基因的结构特点 | 第104-125页 |
| 3.3.2 TCRα/δ基因的表达特点 | 第125-152页 |
| 第四章 讨论与展望 | 第152-158页 |
| 第五章 结论 | 第158-159页 |
| 参考文献 | 第159-170页 |
| 致谢 | 第170-171页 |
| 附录 | 第171-184页 |
| 个人简历 | 第184页 |