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查尔酮衍生物cc-85调节活性氧诱导食管癌细胞凋亡的作用机制研究

摘要第4-6页
Abstract第6-7页
英文缩略词表第11-12页
1 绪言第12-25页
    1.1 食管癌的治疗与研究进展第12-13页
    1.2 查尔酮类的活性研究进展第13-22页
        1.2.1 抗氧化活性第15页
        1.2.2 抗菌活性第15-16页
        1.2.3 抗炎活性第16-17页
        1.2.4 抗艾滋病作用第17-18页
        1.2.5 抗疟疾作用第18页
        1.2.6 抗肿瘤活性第18-22页
    1.3 查尔酮类合成方法的进展研究第22-23页
    1.4 提出课题第23-25页
2 Cc-85 能够显著抑制人类食管癌细胞系生长和诱导细胞凋亡第25-37页
    2.1 实验仪器第25-26页
    2.2 实验试剂第26页
    2.3 化合物和细胞株第26-27页
    2.4 试剂配制方法第27-28页
    2.5 实验方法第28-32页
        2.5.1 细胞培养技术第28-32页
    2.6 结果第32-37页
        2.6.1 Cc-85 显着抑制人食管癌细胞系的存活率第32-34页
        2.6.2 Cc-85 诱导EC109和KYSE750细胞凋亡第34-36页
        2.6.3 Cc-85 诱导EC109细胞核的形态变化第36-37页
3 Cc-85 对外源性死亡受体途径的影响第37-45页
    3.1 实验仪器第37-38页
    3.2 实验试剂第38-39页
    3.3 化合物和细胞株第39页
    3.4 实验方法第39-44页
        3.4.1 细胞培养第41页
        3.4.2 蛋白质免疫印迹(Western Blot)法步骤第41-44页
    3.5 结果第44-45页
4 Cc-85 部分依赖于caspase蛋白家族导致细胞凋亡第45-50页
    4.1 实验仪器第45-46页
    4.2 实验试剂第46-47页
    4.3 化合物和细胞株第47页
    4.4 实验方法第47-48页
        4.4.1 细胞培养第47-48页
        4.4.2 FITC-Annexin V/PI双染细胞凋亡试剂盒对于凋亡的检测步骤第48页
        4.4.3 蛋白质免疫印迹(Western Blot)法第48页
    4.5 结果第48-50页
        4.5.1 Cc-85 有效活化EC109细胞内caspase-3,8,9第48页
        4.5.2 Caspase全酶抑制剂能够部分阻断cc-85 诱导的EC109凋亡第48-50页
5 Cc-85 通过线粒体途径诱导EC109凋亡第50-56页
    5.1 实验仪器第50-51页
    5.2 实验试剂第51-52页
    5.3 化合物和细胞株第52-53页
    5.4 实验方法第53-54页
        5.4.1 细胞培养第53页
        5.4.2 检测线粒体膜电位方法步骤第53页
        5.4.3 蛋白质免疫印迹(Western Blot)法第53-54页
    5.5 结果第54-56页
        5.5.1 Cc-85 能够诱导线粒体膜电位(MMP)下降第54-55页
        5.5.2 Cc-85 显著调节线粒体途径相关蛋白的表达第55-56页
6 Cc-85 引起EC109内ROS水平升高以诱导凋亡第56-68页
    6.1 实验仪器第56-57页
    6.2 实验试剂第57-58页
    6.3 化合物和细胞株第58-59页
    6.4 实验方法第59-61页
        6.4.1 细胞培养第59页
        6.4.2 检测线粒体膜电位方法第59页
        6.4.3 蛋白质免疫印迹(Western Blot)法第59页
        6.4.4 MTT法测定细胞生存率第59页
        6.4.5 FITC-Annexin V/PI双染细胞凋亡试剂盒对于细胞凋亡的检测方法第59页
        6.4.6 DCFH-DA荧光探针检测活性氧第59-60页
        6.4.7 免疫荧光检测Nrf2方法第60-61页
    6.5 结果第61-68页
7 讨论第68-71页
全文总结第71-72页
参考文献第72-78页
个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果第78-79页
致谢第79页

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