摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
英文缩略词表 | 第11-12页 |
1 绪言 | 第12-25页 |
1.1 食管癌的治疗与研究进展 | 第12-13页 |
1.2 查尔酮类的活性研究进展 | 第13-22页 |
1.2.1 抗氧化活性 | 第15页 |
1.2.2 抗菌活性 | 第15-16页 |
1.2.3 抗炎活性 | 第16-17页 |
1.2.4 抗艾滋病作用 | 第17-18页 |
1.2.5 抗疟疾作用 | 第18页 |
1.2.6 抗肿瘤活性 | 第18-22页 |
1.3 查尔酮类合成方法的进展研究 | 第22-23页 |
1.4 提出课题 | 第23-25页 |
2 Cc-85 能够显著抑制人类食管癌细胞系生长和诱导细胞凋亡 | 第25-37页 |
2.1 实验仪器 | 第25-26页 |
2.2 实验试剂 | 第26页 |
2.3 化合物和细胞株 | 第26-27页 |
2.4 试剂配制方法 | 第27-28页 |
2.5 实验方法 | 第28-32页 |
2.5.1 细胞培养技术 | 第28-32页 |
2.6 结果 | 第32-37页 |
2.6.1 Cc-85 显着抑制人食管癌细胞系的存活率 | 第32-34页 |
2.6.2 Cc-85 诱导EC109和KYSE750细胞凋亡 | 第34-36页 |
2.6.3 Cc-85 诱导EC109细胞核的形态变化 | 第36-37页 |
3 Cc-85 对外源性死亡受体途径的影响 | 第37-45页 |
3.1 实验仪器 | 第37-38页 |
3.2 实验试剂 | 第38-39页 |
3.3 化合物和细胞株 | 第39页 |
3.4 实验方法 | 第39-44页 |
3.4.1 细胞培养 | 第41页 |
3.4.2 蛋白质免疫印迹(Western Blot)法步骤 | 第41-44页 |
3.5 结果 | 第44-45页 |
4 Cc-85 部分依赖于caspase蛋白家族导致细胞凋亡 | 第45-50页 |
4.1 实验仪器 | 第45-46页 |
4.2 实验试剂 | 第46-47页 |
4.3 化合物和细胞株 | 第47页 |
4.4 实验方法 | 第47-48页 |
4.4.1 细胞培养 | 第47-48页 |
4.4.2 FITC-Annexin V/PI双染细胞凋亡试剂盒对于凋亡的检测步骤 | 第48页 |
4.4.3 蛋白质免疫印迹(Western Blot)法 | 第48页 |
4.5 结果 | 第48-50页 |
4.5.1 Cc-85 有效活化EC109细胞内caspase-3,8,9 | 第48页 |
4.5.2 Caspase全酶抑制剂能够部分阻断cc-85 诱导的EC109凋亡 | 第48-50页 |
5 Cc-85 通过线粒体途径诱导EC109凋亡 | 第50-56页 |
5.1 实验仪器 | 第50-51页 |
5.2 实验试剂 | 第51-52页 |
5.3 化合物和细胞株 | 第52-53页 |
5.4 实验方法 | 第53-54页 |
5.4.1 细胞培养 | 第53页 |
5.4.2 检测线粒体膜电位方法步骤 | 第53页 |
5.4.3 蛋白质免疫印迹(Western Blot)法 | 第53-54页 |
5.5 结果 | 第54-56页 |
5.5.1 Cc-85 能够诱导线粒体膜电位(MMP)下降 | 第54-55页 |
5.5.2 Cc-85 显著调节线粒体途径相关蛋白的表达 | 第55-56页 |
6 Cc-85 引起EC109内ROS水平升高以诱导凋亡 | 第56-68页 |
6.1 实验仪器 | 第56-57页 |
6.2 实验试剂 | 第57-58页 |
6.3 化合物和细胞株 | 第58-59页 |
6.4 实验方法 | 第59-61页 |
6.4.1 细胞培养 | 第59页 |
6.4.2 检测线粒体膜电位方法 | 第59页 |
6.4.3 蛋白质免疫印迹(Western Blot)法 | 第59页 |
6.4.4 MTT法测定细胞生存率 | 第59页 |
6.4.5 FITC-Annexin V/PI双染细胞凋亡试剂盒对于细胞凋亡的检测方法 | 第59页 |
6.4.6 DCFH-DA荧光探针检测活性氧 | 第59-60页 |
6.4.7 免疫荧光检测Nrf2方法 | 第60-61页 |
6.5 结果 | 第61-68页 |
7 讨论 | 第68-71页 |
全文总结 | 第71-72页 |
参考文献 | 第72-78页 |
个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第78-79页 |
致谢 | 第79页 |