低氧对团头鲂细胞凋亡及抗氧化酶活性的影响
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 缩略语表 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-20页 |
| 1 鱼类低氧应答研究进展 | 第11-14页 |
| 1.1 鱼类面对长期低氧和急性低氧的响应机制 | 第11-13页 |
| 1.2 低氧介导的线粒体途径 | 第13页 |
| 1.3 低氧对鱼类的影响 | 第13-14页 |
| 1.3.1 低氧会造成鱼类行为发育等受限甚至死亡 | 第13-14页 |
| 1.3.2 低氧可导致鱼类组织结构的变化 | 第14页 |
| 2 低氧介导的细胞凋亡途径 | 第14-16页 |
| 3 Bcl-2 在细胞凋亡中的作用 | 第16-17页 |
| 3.1 Bcl-2 基因 | 第16-17页 |
| 3.2 Bcl-2 蛋白结构域 | 第17页 |
| 3.3 Bcl-2 对细胞凋亡的调控 | 第17页 |
| 4 低氧引起抗氧化酶活性变化 | 第17-18页 |
| 5 团头鲂低氧研究进展 | 第18-19页 |
| 6 选题目的与意义 | 第19-20页 |
| 第二章 低氧对团头鲂细胞凋亡以抗氧化酶活性的影响 | 第20-44页 |
| 1 前言 | 第20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-31页 |
| 2.1 实验材料采集 | 第20-23页 |
| 2.1.1 实验鱼的准备和处理 | 第20-22页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第22-23页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第23页 |
| 2.2 组织切片HE染色和电镜观察 | 第23-24页 |
| 2.3 心脏线粒体的提取 | 第24-25页 |
| 2.4 心脏总RNA的提取 | 第25页 |
| 2.5 cDNA的制备 | 第25-26页 |
| 2.6 引物设计以及荧光定量PCR | 第26-27页 |
| 2.7 TUNEL检测心脏组织中的细胞凋亡 | 第27-28页 |
| 2.8 心脏和肝脏中抗氧化酶活性检测 | 第28-30页 |
| 2.9 数据分析 | 第30-31页 |
| 3 结果与分析 | 第31-39页 |
| 3.1 低氧对团头鲂不同组织结构的影响 | 第31-33页 |
| 3.2 心脏超显微结构的变化 | 第33页 |
| 3.3 心肌细胞凋亡的检测结果 | 第33-35页 |
| 3.4 心脏中bcl-2 基因的表达变化 | 第35-36页 |
| 3.5 心脏线粒体中MDA和SOD的变化 | 第36-37页 |
| 3.6 肝脏中氧化相关指标的变化 | 第37-39页 |
| 4 讨论 | 第39-43页 |
| 4.1 低氧对不同组织的影响分析 | 第39-40页 |
| 4.2 低氧引起心肌线粒体结构变化分析 | 第40页 |
| 4.3 低氧诱导心脏细胞凋亡分析 | 第40-41页 |
| 4.4 低氧引起抗氧化酶活性变化分析 | 第41-43页 |
| 5 小结 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-58页 |
| 论文发表情况 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 附录:不同低氧处理对鱼类肝脏中抗氧化酶活性的影响 | 第60-61页 |
