摘要 | 第6-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
第一章 文献综述 | 第16-32页 |
1.1 藻毒素对土壤和水体的环境意义 | 第16-23页 |
1.1.1 蓝藻毒素介绍 | 第16-17页 |
1.1.2 藻毒素土壤中的危害 | 第17-20页 |
1.1.3 水体中的危害 | 第20-23页 |
1.2 微囊藻毒素的研究 | 第23-26页 |
1.2.1 MC的结构 | 第23-24页 |
1.2.2 MC的毒性 | 第24-25页 |
1.2.3 MC的迁移和转化 | 第25-26页 |
1.3 微囊藻毒素基因的研究 | 第26-32页 |
1.3.1 mcy的基因组成及其功能 | 第27-28页 |
1.3.2 不同蓝藻mcy基因的对比 | 第28-29页 |
1.3.3 微囊藻毒素基因(mcy)的变异 | 第29-32页 |
第二章 研究内容与方法 | 第32-38页 |
2.1 选题依据 | 第32-34页 |
2.1.1 土壤藻类广泛分布 | 第32页 |
2.1.2 藻类毒素的环境危害 | 第32页 |
2.1.3 微囊藻毒素基因簇(mcy)研究的必要性 | 第32-33页 |
2.1.4 浮丝藻的选择 | 第33-34页 |
2.1.5 未培养的研究方法 | 第34页 |
2.2 研究目的和意义 | 第34-35页 |
2.2.1 研究目的 | 第34-35页 |
2.2.2 研究意义 | 第35页 |
2.3 研究内容 | 第35-36页 |
2.3.1 单个浮丝藻的微量DNA提取及保存技术 | 第35页 |
2.3.2 微囊藻毒素基因的引物体系设计 | 第35页 |
2.3.3 浮丝藻中微囊藻毒素基因簇内的变异 | 第35-36页 |
2.3.4 转座子ISPlr1在mcy基因内的变化研究 | 第36页 |
2.3.5 各变异在地理上和时间上的变化及其相互关系 | 第36页 |
2.4 主要的研究方法与技术 | 第36-37页 |
2.4.1 单个浮丝藻的采样及分离技术 | 第36页 |
2.4.2 超声波提取浮丝藻DNA | 第36页 |
2.4.3 安捷伦2100生物芯片分析技术 | 第36-37页 |
2.4.4 Phire热启动植物聚合酶的直接PCR技术 | 第37页 |
2.5 技术路线 | 第37-38页 |
第三章 单个浮丝藻的DNA提取及保存 | 第38-50页 |
3.1 材料和方法 | 第39-41页 |
3.1.1 供试样品 | 第39页 |
3.1.2 试验设计 | 第39-40页 |
3.1.3 DNA提取 | 第40页 |
3.1.4 DNA扩增 | 第40-41页 |
3.1.5 数据分析 | 第41页 |
3.1.6 试剂 | 第41页 |
3.2 试验结果 | 第41-48页 |
3.2.1 单个浮丝藻DNA质量分析 | 第41-42页 |
3.2.2 超声波制备浮丝藻DNA参数优化 | 第42-45页 |
3.2.3 DNA保存技术 | 第45-48页 |
3.3 讨论 | 第48页 |
3.4 本章小结 | 第48-50页 |
第四章 极限条件下微囊藻毒素基因簇引物体系的建立 | 第50-63页 |
4.1 材料方法 | 第51-53页 |
4.1.1 供试DNA样品 | 第51页 |
4.1.2 实验设计 | 第51-53页 |
4.1.3 DNA扩增 | 第53页 |
4.1.4 试剂 | 第53页 |
4.2 结果分析 | 第53-61页 |
4.2.1 引物设计限制条件 | 第53-56页 |
4.2.2 mcy基因簇的引物体系设计 | 第56-59页 |
4.2.3 引物体系的检测 | 第59-61页 |
4.3 讨论 | 第61-62页 |
4.3.1 浮丝藻DNA的利用 | 第61页 |
4.3.2 微囊藻毒素的全序列引物 | 第61-62页 |
4.4 本章小结 | 第62-63页 |
第五章 微囊藻毒素基因簇内的变异 | 第63-74页 |
5.1 材料和方法 | 第63-65页 |
5.1.1 样品的采集 | 第63页 |
5.1.2 浮丝藻的分离 | 第63-64页 |
5.1.3 DNA的提取 | 第64页 |
5.1.4 保守序列分析 | 第64页 |
5.1.5 DNA扩增 | 第64-65页 |
5.2 结果分析 | 第65-69页 |
5.2.1 微囊藻毒素基因内簇内发现的变异 | 第65-67页 |
5.2.2 微囊藻毒素基因簇内的重复序列 | 第67页 |
5.2.3 mcy基因变异在亚种群中的变化 | 第67-68页 |
5.2.4 微囊藻毒素基因变异间的进化 | 第68-69页 |
5.3 讨论 | 第69-72页 |
5.3.1 mcy基因中变异的发现 | 第69-71页 |
5.3.2 特殊重复序列的意义 | 第71页 |
5.3.3 mcy基因变异间的互相关系 | 第71-72页 |
5.3.4 mcy基因变异的系统发育年龄 | 第72页 |
5.4 本章小结 | 第72-74页 |
第六章 转座子ISPlr1在mcy基因内的变化研究 | 第74-81页 |
6.1 材料和方法 | 第74-75页 |
6.1.1 DNA样品 | 第74页 |
6.1.2 引物设计 | 第74-75页 |
6.1.3 DNA扩增 | 第75页 |
6.2 结果分析 | 第75-79页 |
6.2.1 转座子ISPlr1的插入位点 | 第75-76页 |
6.2.2 转座子ISPlr1插入的正向重复序列 | 第76-77页 |
6.2.3 转座子ISPlr1的方向 | 第77-79页 |
6.3 讨论 | 第79-80页 |
6.3.1 转座子的灵活性 | 第79页 |
6.3.2 转座子与RR序列 | 第79-80页 |
6.4 本章小结 | 第80-81页 |
第七章 微囊藻毒素基因变异在时间和空间上的分布 | 第81-90页 |
7.1 材料和方法 | 第81-83页 |
7.1.1 采样 | 第81-82页 |
7.1.2 DNA提取 | 第82-83页 |
7.1.3 DNA扩增 | 第83页 |
7.2 结果与分析 | 第83-88页 |
7.2.1 浮丝藻长度与DNA扩增结果间关系 | 第83-84页 |
7.2.2 地理分布对浮丝藻微囊藻毒素基因的影响 | 第84-86页 |
7.2.3 季节变化对浮丝藻微囊藻毒素基因的影响 | 第86-88页 |
7.3 讨论 | 第88页 |
7.3.1 浮丝藻长度与DNA扩增结果间关系 | 第88页 |
7.3.2 mcy基因变异的时空变化 | 第88页 |
7.4 本章小结 | 第88-90页 |
第八章 硫酸盐对厌氧水稻土中光合与铁循环过程的影响 | 第90-100页 |
8.1 材料与方法 | 第91-92页 |
8.1.1 供试土壤 | 第91页 |
8.1.2 试验设计和培养方法 | 第91页 |
8.1.3 采样及检测方法 | 第91页 |
8.1.4 数据分析 | 第91-92页 |
8.2 研究结果 | 第92-96页 |
8.2.1 暗光条件下Fe(II)含量变化 | 第92-93页 |
8.2.2 Chl a浓度变化 | 第93-95页 |
8.2.3 光照条件下Fe(II)的变化 | 第95-96页 |
8.2.4 pH变化 | 第96页 |
8.3 讨论 | 第96-99页 |
8.3.1 铁还原过程 | 第96-97页 |
8.3.2 光合过程 | 第97-98页 |
8.3.3 铁氧化过程 | 第98页 |
8.3.4 pH变化 | 第98-99页 |
8.4 小结 | 第99-100页 |
第九章 中国典型水稻土中硫酸盐变化对土壤藻的影响 | 第100-112页 |
9.1 材料方法 | 第101-102页 |
9.1.1 样品采集 | 第101页 |
9.1.2 实验设计 | 第101页 |
9.1.3 实验分析与测定 | 第101-102页 |
9.1.4 数据分析 | 第102页 |
9.2 结果分析 | 第102-108页 |
9.2.1 不同浓度硫酸盐淹水培养后对Chl a含量变化的影响 | 第102-103页 |
9.2.2 不同浓度硫酸盐淹水培养后对DOC含量变化的影响 | 第103-105页 |
9.2.3 硫酸盐淹水培养水稻土后藻类种群的变化 | 第105-106页 |
9.2.4 硫酸盐淹水培养水稻土后SUVA254的变化 | 第106页 |
9.2.5 硫酸盐淹水培养水稻土后荧光指数的变化 | 第106-107页 |
9.2.6 三维荧光及平行因子分析 | 第107-108页 |
9.3 讨论 | 第108-110页 |
9.3.1 硫酸盐对藻类群落的影响 | 第108-109页 |
9.3.2 硫酸盐对DOC的影响 | 第109-110页 |
9.3.3 硫酸盐对DOM的影响 | 第110页 |
9.4 本章小结 | 第110-112页 |
第十章 结论与展望 | 第112-115页 |
10.1 本文的主要结论 | 第112-114页 |
10.2 论文创新点 | 第114页 |
10.3 有待进一步研究的问题 | 第114-115页 |
参考文献 | 第115-130页 |
缩略词 | 第130-131页 |
致谢 | 第131-132页 |
作者简介 | 第132页 |