| 摘要 | 第5-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 缩略词表 | 第17-19页 |
| 第一章 研究背景和立题依据 | 第19-45页 |
| 1.1 G蛋白偶联受体研究进展 | 第19-29页 |
| 1.1.1 G蛋白偶联受体概述 | 第19-20页 |
| 1.1.2 G蛋白偶联受体的分类 | 第20-22页 |
| 1.1.3 G蛋白偶联受体的结构特征 | 第22-24页 |
| 1.1.4 G蛋白偶联受体的生理功能 | 第24-26页 |
| 1.1.5 G蛋白偶联受体的作用机制 | 第26-27页 |
| 1.1.6 G蛋白偶联受体介导的细胞信号转导通路 | 第27-29页 |
| 1.2 生物胺类受体研究进展 | 第29-37页 |
| 1.2.1 生物胺类受体概述 | 第29-31页 |
| 1.2.2 章鱼胺受体的研究进展 | 第31-32页 |
| 1.2.3 酪胺受体的研究进展 | 第32-33页 |
| 1.2.4 肾上腺素受体的研究进展 | 第33-34页 |
| 1.2.5 去甲肾上腺素受体的研究进展 | 第34页 |
| 1.2.6 多巴胺受体的研究进展 | 第34-35页 |
| 1.2.7 L-DOPA受体的研究进展 | 第35-36页 |
| 1.2.8 血清素受体的研究进展 | 第36页 |
| 1.2.9 组胺受体的研究进展 | 第36-37页 |
| 1.3 立题依据与研究内容 | 第37-45页 |
| 1.3.1 立题依据 | 第37-43页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第43-45页 |
| 第二章 长牡蛎中潜在G蛋白偶联受体的家族分类及表达谱分析 | 第45-55页 |
| 2.1 数据库及分析软件 | 第45-46页 |
| 2.2 实验方法 | 第46-47页 |
| 2.2.1 长牡蛎中潜在GPCR序列的筛选鉴定 | 第46页 |
| 2.2.2 长牡蛎中潜在GPCR序列的系统发育分析 | 第46-47页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第47-54页 |
| 2.3.1 长牡蛎中潜在GPCR蛋白序列的家族分类和系统发育分析 | 第47-48页 |
| 2.3.2 潜在生物胺类受体在长牡蛎不同发育时期的表达谱分析 | 第48-54页 |
| 2.4 本章小结 | 第54-55页 |
| 第三章 新型章鱼胺/酪胺受体Cg GPR1在长牡蛎不同发育时期中的功能研究 | 第55-93页 |
| 3.1 实验材料、试剂和仪器 | 第56-61页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第56页 |
| 3.1.2 培养基 | 第56-57页 |
| 3.1.3 主要试剂和试剂盒 | 第57-59页 |
| 3.1.4 主要仪器设备和实验耗材 | 第59-60页 |
| 3.1.5 数据库及分析软件 | 第60-61页 |
| 3.2 实验方法 | 第61-76页 |
| 3.2.1 样品的采集和处理 | 第61-63页 |
| 3.2.2 RNA的提取和cDNA的合成 | 第63-65页 |
| 3.2.3 长牡蛎CgGPR1基因的克隆和全长序列的获得 | 第65-68页 |
| 3.2.4 长牡蛎CgGPR1基因的多序列比对和系统发育分析 | 第68-69页 |
| 3.2.5 长牡蛎CgGPR1基因的荧光定量PCR分析 | 第69-70页 |
| 3.2.6 长牡蛎CgGPR1的Western Blot分析 | 第70-71页 |
| 3.2.7 长牡蛎CgGPR1的整体免疫荧光定位 | 第71-72页 |
| 3.2.8 长牡蛎CgGPR1稳定过表达细胞株的构建 | 第72-75页 |
| 3.2.9 长牡蛎CgGPR1的药理学特性和功能研究 | 第75-76页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第76-91页 |
| 3.3.1 长牡蛎CgGPR1基因的克隆和序列分析 | 第76-80页 |
| 3.3.2 长牡蛎CgGPR1的系统发育分析 | 第80-82页 |
| 3.3.3 CgGPR1在长牡蛎不同发育时期的荧光定量PCR分析 | 第82-83页 |
| 3.3.4 CgGPR1在长牡蛎不同发育时期的Western Blot分析 | 第83-84页 |
| 3.3.5 CgGPR1在长牡蛎幼虫发育时期的整体免疫荧光定位分析 | 第84-87页 |
| 3.3.6 CgGPR1在长牡蛎不同成体组织中的荧光定量PCR分析 | 第87-88页 |
| 3.3.7 CgGPR1在人源HEK293细胞株中的稳定过表达及其药理学特性分析 | 第88-91页 |
| 3.4 本章小结 | 第91-93页 |
| 第四章 新型酪胺受体CgTAR1在长牡蛎不同发育时期中的时空表达模式分析 | 第93-111页 |
| 4.1 实验材料、试剂和仪器 | 第94页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第94页 |
| 4.1.2 培养基 | 第94页 |
| 4.1.3 主要试剂和试剂盒 | 第94页 |
| 4.1.4 主要仪器设备和实验耗材 | 第94页 |
| 4.1.5 数据库及分析软件 | 第94页 |
| 4.2 实验方法 | 第94-96页 |
| 4.2.1 样品的采集和处理 | 第94页 |
| 4.2.2 RNA的提取和cDNA的合成 | 第94页 |
| 4.2.3 长牡蛎CgTAR1基因的克隆和全长序列的获得 | 第94-95页 |
| 4.2.4 长牡蛎CgTAR1基因的多序列比对和系统发育分析 | 第95页 |
| 4.2.5 长牡蛎CgTAR1基因的荧光定量PCR分析 | 第95页 |
| 4.2.6 长牡蛎CgTAR1的Western Blot分析 | 第95-96页 |
| 4.2.7 长牡蛎CgTAR1的整体免疫荧光定位 | 第96页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第96-109页 |
| 4.3.1 长牡蛎CgTAR1基因的克隆和序列分析 | 第96-101页 |
| 4.3.2 长牡蛎CgTAR1的系统发育分析 | 第101-103页 |
| 4.3.3 CgTAR1在长牡蛎不同发育时期的荧光定量PCR分析 | 第103-104页 |
| 4.3.4 CgTAR1在长牡蛎不同发育时期的Western Blot分析 | 第104-106页 |
| 4.3.5 CgTAR1在长牡蛎幼虫发育时期的整体免疫荧光定位分析 | 第106-108页 |
| 4.3.6 CgTAR1在长牡蛎不同成体组织中的荧光定量PCR分析 | 第108-109页 |
| 4.4 本章小结 | 第109-111页 |
| 全文总结与展望 | 第111-113页 |
| 参考文献 | 第113-127页 |
| 致谢 | 第127-129页 |
| 作者简历 | 第129-130页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文与研究成果 | 第130页 |
