中文摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
英文缩写注释 | 第8-14页 |
第一章 综述 | 第14-23页 |
1 白杨素的药用价值及特性 | 第14-15页 |
1.1 白杨素的药用价值 | 第14页 |
1.2 白杨素药代动力学研究现状 | 第14-15页 |
1.3 白杨素的生物利用度 | 第15页 |
2 葡萄糖醛酸代谢 | 第15-19页 |
2.1 葡萄糖醛酸化代谢简介 | 第15-16页 |
2.2 UGT酶的组织分布 | 第16-17页 |
2.3 UGT代谢的反应机理 | 第17-18页 |
2.4 UGT代谢体外评价模型 | 第18-19页 |
3 口服纳米乳制剂及其研究进展 | 第19-22页 |
3.1 口服给药方式的优缺点 | 第19页 |
3.2 纳米乳简介 | 第19-20页 |
3.3 纳米乳制备方法 | 第20-21页 |
3.4 纳米乳制剂促进药物口服吸收的机制 | 第21-22页 |
4 辅料抑制代谢研究进展 | 第22页 |
5 研究内容及意义 | 第22-23页 |
第二章 基于微粒体及重组酶的UGT代谢抑制研究 | 第23-32页 |
1 实验材料 | 第23-24页 |
1.1 实验仪器 | 第23页 |
1.2 实验试剂 | 第23-24页 |
2 实验方法 | 第24-26页 |
2.1 溶液配制 | 第24页 |
2.2 白杨素UGT代谢活性测定 | 第24-25页 |
2.3 UGT代谢抑制实验 | 第25-26页 |
2.4 抑制机制分析 | 第26页 |
2.5 白杨素及其UGT代谢物的定量分析 | 第26页 |
2.6 统计学处理 | 第26页 |
3 实验结果 | 第26-30页 |
3.1 白杨素UGT代谢物的鉴定 | 第26-27页 |
3.2 辅料对白杨素UGT代谢的调节作用 | 第27-29页 |
3.3 5种辅料对白杨素代谢的影响 | 第29-30页 |
3.4 油酸钠对白杨素UGT代谢的抑制机制 | 第30页 |
4 小结与讨论 | 第30-32页 |
第三章 基于HeLa1A1细胞的UGT代谢抑制研究 | 第32-38页 |
1 实验材料 | 第32-33页 |
1.1 实验仪器 | 第32页 |
1.2 实验试剂 | 第32-33页 |
1.3 细胞来源 | 第33页 |
2 实验方法 | 第33-35页 |
2.1 溶液配制 | 第33页 |
2.2 细胞培养 | 第33页 |
2.3 细胞孵育 | 第33-34页 |
2.4 MTT法 | 第34-35页 |
2.5 统计学处理 | 第35页 |
3 实验结果 | 第35-36页 |
3.1 辅料对细胞内白杨素UGT代谢的影响 | 第35页 |
3.2 辅料对HeLa1A1细胞存活率的影响 | 第35-36页 |
4 小结与讨论 | 第36-38页 |
第四章 SO-NE与T80-NE的制备与表征 | 第38-47页 |
1 实验材料 | 第38-39页 |
1.1 实验仪器 | 第38页 |
1.2 实验试剂 | 第38-39页 |
1.3 细胞来源 | 第39页 |
2 实验方法 | 第39-42页 |
2.1 溶液配制 | 第39页 |
2.2 SO-NE及T80-NE的制备 | 第39页 |
2.3 SO-NE及T80-NE的表征 | 第39-40页 |
2.4 体外释放实验 | 第40-41页 |
2.5 细胞摄取实验 | 第41-42页 |
2.6 统计学处理 | 第42页 |
3 实验结果 | 第42-46页 |
3.1 SO-NE及T80-NE的制备与表征 | 第42-44页 |
3.2 体外释放 | 第44-45页 |
3.3 细胞摄取机制 | 第45-46页 |
4 小结与讨论 | 第46-47页 |
第五章 SO-NE与T80-NE的药动学评价 | 第47-53页 |
1 实验材料 | 第47-48页 |
1.1 实验仪器 | 第47页 |
1.2 实验试剂 | 第47-48页 |
1.3 实验动物 | 第48页 |
2 实验方法 | 第48-50页 |
2.1 溶液配制 | 第48页 |
2.2 大鼠药动学实验 | 第48-49页 |
2.3 样品处理 | 第49页 |
2.4 质谱分析 | 第49页 |
2.5 统计学处理 | 第49-50页 |
3 实验结果 | 第50-51页 |
4 小结与讨论 | 第51-53页 |
全文总结 | 第53-55页 |
参考文献 | 第55-63页 |
在校期间论文发表情况 | 第63-64页 |
致谢 | 第64页 |