| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-7页 |
| 第一章 引言 | 第10-13页 |
| 1.1 转录组测序技术简介 | 第10页 |
| 1.2 温度对鱼类繁殖和生长的影响 | 第10-11页 |
| 1.3 SSR标记技术应用进展 | 第11页 |
| 1.4 同工酶简介 | 第11页 |
| 1.5 银鲳的相关研究进展及本研究的目的意义 | 第11-13页 |
| 第二章 温度胁迫下银鲳转录组的DE NOVO拼接和基因差异表达的分析 | 第13-40页 |
| 2.1 材料和方法 | 第13-14页 |
| 2.2 结果 | 第14-36页 |
| 2.2.1 银鲳的 c DNA 序列分析与组装 | 第14-18页 |
| 2.2.2 银鲳基因序列功能注释信息 | 第18-22页 |
| 2.2.3 热胁迫处理实验组与对照组差异基因表达分析 | 第22-29页 |
| 2.2.3.1 热胁迫处理实验组与对照组差异表达基因的GO功能富集结果 | 第25-27页 |
| 2.2.3.2 热胁迫处理组与对照组差异表达基因的KEGG功能富集结果 | 第27-29页 |
| 2.2.4 冷胁迫处理实验组与对照组差异基因表达分析 | 第29-35页 |
| 2.2.4.1 冷胁迫处理实验组与对照组差异表达基因的GO功能富集结果 | 第31-33页 |
| 2.2.4.2 冷胁迫处理实验组与对照组差异表达基因的KEGG功能富集结果 | 第33-35页 |
| 2.2.5 差异表达基因层次聚类分析 | 第35-36页 |
| 2.3 讨论 | 第36-40页 |
| 第三章 基于银鲳 RNA-seq 数据中 SSR 标记的信息分析 | 第40-48页 |
| 3.1 材料与方法 | 第40-41页 |
| 3.1.1 银鲳RNA提取及CDNA文库构建 | 第40页 |
| 3.1.2 RNA测序及组装 | 第40页 |
| 3.1.3 银鲳SSR标记筛选 | 第40-41页 |
| 3.1.4 统计与分析 | 第41页 |
| 3.2 结果与分析 | 第41-45页 |
| 3.2.1 银鲳转录组中SSR位点的数量与分布信息 | 第41-42页 |
| 3.2.2 银鲳转录组SSR的特点 | 第42-44页 |
| 3.2.3 银鲳转录组SSR多态性评估 | 第44-45页 |
| 3.3 讨论 | 第45-48页 |
| 第四章 银鲳不同组织中 4 种同工酶的表达差异 | 第48-56页 |
| 4.1 材料与方法 | 第48-49页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第48页 |
| 4.1.2 酶液样品制备 | 第48页 |
| 4.1.3 电泳方法 | 第48页 |
| 4.1.4 染色及酶谱分析 | 第48-49页 |
| 4.2 结果与分析 | 第49-53页 |
| 4.2.1 EST | 第49-50页 |
| 4.2.2 LDH | 第50-51页 |
| 4.2.3 GDH | 第51-52页 |
| 4.2.4 ADH | 第52-53页 |
| 4.3 讨论 | 第53-55页 |
| 4.3.1 银鲳同工酶表达的组织特异性 | 第53-54页 |
| 4.3.2 银鲳不同组织同工酶表达的特异性及其与功能的关系 | 第54-55页 |
| 4.4 小结 | 第55-56页 |
| 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-63页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
