| 摘要 | 第2-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 引言 | 第10-12页 |
| 第一部分 右美托咪定对海马神经元细胞缺氧复氧损伤的保护作用 | 第12-27页 |
| 1 材料和方法 | 第12-17页 |
| 1.1 动物 | 第12页 |
| 1.2 主要仪器 | 第12页 |
| 1.3 主要试剂和材料 | 第12-13页 |
| 1.4 原代海马神经元培养 | 第13-14页 |
| 1.5 分组 | 第14页 |
| 1.6 缺血/再灌注模型的建立 | 第14页 |
| 1.7 神经元细胞生长及线粒体形态的变化 | 第14-15页 |
| 1.8 采用流式细胞术检测细胞凋亡率 | 第15页 |
| 1.9 Western blot法测定Cyt C蛋白以及caspase3的表达 | 第15页 |
| 1.10 统计学处理 | 第15-17页 |
| 2 实验结果 | 第17-22页 |
| 2.1 电镜下线粒体超微结构的变化 | 第17页 |
| 2.2 神经元细胞活性 | 第17-19页 |
| 2.3 海马神经元的细胞凋亡率-流式细胞术检测 | 第19-20页 |
| 2.4 凋亡相关蛋白的表达 | 第20-22页 |
| 3 讨论 | 第22-27页 |
| 第二部分 右美托咪定对大鼠海马神经元缺氧复氧损伤中线粒体分裂的影响 | 第27-43页 |
| 1 材料和方法 | 第27-32页 |
| 1.1 动物 | 第27页 |
| 1.2 主要仪器 | 第27页 |
| 1.3 主要试剂和材料 | 第27-28页 |
| 1.4 原代海马神经元培养 | 第28-29页 |
| 1.5 分组 | 第29页 |
| 1.6 缺血/再灌注模型的建立 | 第29页 |
| 1.7 神经元细胞生长状态及细胞活性测定 | 第29-30页 |
| 1.8 钙离子荧光强度间接测定细胞质Ca2+浓度及Ca N活性测定 | 第30页 |
| 1.9 Western blot法测定Drp1、Fis1蛋白的表达 | 第30-31页 |
| 1.10 统计学处理 | 第31-32页 |
| 2 结果 | 第32-39页 |
| 2.1 海马神经元细胞的生长状态（形态学观察） | 第32-33页 |
| 2.2 神经元细胞活性 | 第33-34页 |
| 2.3 细胞质Ca2+浓度 | 第34-36页 |
| 2.4 CaN活性 | 第36-37页 |
| 2.5 线粒体分裂相关蛋白的表达 | 第37-39页 |
| 3 讨论 | 第39-43页 |
| 结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-47页 |
| 综述 右美托咪定对脑缺血/再灌注损伤保护及其机制的研究现状 | 第47-67页 |
| 参考文献 | 第61-67页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第67-68页 |
| 英文缩略词表 | 第68-69页 |
| 附录 | 第69-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
