致谢 | 第6-7页 |
摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-10页 |
缩写表 | 第13-15页 |
行为学名词定义 | 第15-16页 |
第一章 绪论 | 第16-25页 |
1.1 研究背景 | 第16-21页 |
1.1.1 传统脑刺激 | 第16-17页 |
1.1.2 基于光遗传学的光刺激 | 第17-21页 |
1.2 国内外研究现状 | 第21-22页 |
1.3 本研究目的、内容与意义 | 第22-24页 |
1.4 动物实验伦理陈述 | 第24-25页 |
第二章 光刺激系统的建立 | 第25-64页 |
2.1 前言 | 第25-26页 |
2.2 病毒包装、纯化浓缩 | 第26-45页 |
2.2.1 材料与方法 | 第26-31页 |
2.2.2 高滴度LV的制备 | 第31-39页 |
2.2.3 高滴度AAV的制备 | 第39-45页 |
2.3 病毒立体定位微注射 | 第45-50页 |
2.3.1 病毒脑区微注射 | 第45-47页 |
2.3.2 大鼠灌流取脑 | 第47-48页 |
2.3.3 大鼠脑冰冻切片及脑片显微成像 | 第48-50页 |
2.4 光路设置 | 第50-59页 |
2.4.1 材料与方法 | 第50-51页 |
2.4.2 实验步骤及结果 | 第51-59页 |
2.5 麻醉状态下光刺激并记录神经元电响应 | 第59-61页 |
2.6 讨论 | 第61-64页 |
第三章 光刺激强度与大鼠防御行为强度相关 | 第64-73页 |
3.1 前言 | 第64-65页 |
3.2 实验材料与方法 | 第65页 |
3.2.1 实验材料 | 第65页 |
3.2.2 溶液配制 | 第65页 |
3.3 光纤埋植 | 第65-66页 |
3.4 清醒状态下光刺激诱发的神经响应和行为变化 | 第66-70页 |
3.5 病毒感染区域及记录电极深度的确认 | 第70-71页 |
3.6 讨论 | 第71-73页 |
第四章 光刺激与电刺激诱发的大鼠防御性行为差异 | 第73-94页 |
4.1 前言 | 第73-74页 |
4.2 实验材料与方法 | 第74页 |
4.2.1 实验材料 | 第74页 |
4.2.2 溶液配制 | 第74页 |
4.3 光纤、电极的埋置 | 第74-77页 |
4.3.1 刺激电极的制作 | 第74-76页 |
4.3.2 光纤/刺激电极的埋植 | 第76-77页 |
4.4 清醒状态下行为学的比较 | 第77-91页 |
4.4.1 僵直阚值刺激 | 第78-86页 |
4.4.2 逃跑阈值刺激 | 第86-91页 |
4.5 讨论 | 第91-94页 |
第五章 光刺激通过精确激活dPAG核团诱发防御行为 | 第94-111页 |
5.1 前言 | 第94-95页 |
5.2 实验材料与方法 | 第95-96页 |
5.2.1 实验材料 | 第95-96页 |
5.2.2 溶液配制 | 第96页 |
5.3 实验步骤及结果 | 第96-109页 |
5.3.1 c-Fos免疫组化 | 第96-101页 |
5.3.2 半定量统计中脑激活强度 | 第101页 |
5.3.3 投射至大鼠dPAG脑区的神经元逆行追踪 | 第101-104页 |
5.3.4 投射至大鼠SC脑区的神经元逆行追踪 | 第104-106页 |
5.3.5 大鼠SC脑区神经元的顺行追踪 | 第106-109页 |
5.4 讨论 | 第109-111页 |
第六章 dPAG内谷氨酸能神经元可单独编码防御性行为 | 第111-117页 |
6.1 前言 | 第111-112页 |
6.2 实验材料与方法 | 第112-113页 |
6.2.1 实验材料 | 第112页 |
6.2.2 溶液配制 | 第112-113页 |
6.3 实验步骤及结果 | 第113-116页 |
6.3.1 携带CaMKⅡα启动子的高滴度AAV包装 | 第113页 |
6.3.2 CaMKⅡα启动子控制下 ChR2的表达 | 第113页 |
6.3.3 选择性激活dPAG谷氨酸能神经元 | 第113-114页 |
6.3.4 dPAG谷氨酸能神经元投射 | 第114-115页 |
6.3.5 SC谷氨酸能神经元投射 | 第115-116页 |
6.4 讨论 | 第116-117页 |
第七章 总结与展望 | 第117-123页 |
7.1 研究工作总结 | 第117-121页 |
7.2 研究工作展望 | 第121-123页 |
参考文献 | 第123-130页 |
作者简历 | 第130页 |