| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 主要符号对照表 | 第8-9页 |
| 第1章 引言 | 第9-18页 |
| 1.1 蛋白质翻译后的修饰概况 | 第9页 |
| 1.2 蛋白质翻译后的类型 | 第9-13页 |
| 1.2.1 磷酸化修饰 | 第9-10页 |
| 1.2.2 泛素化修饰 | 第10-11页 |
| 1.2.3 脂基化修饰 | 第11-13页 |
| 1.3 磷酸化修饰对酶识别底物稳定性的影响 | 第13-15页 |
| 1.3.1 酶识别底物磷酸化修饰对酶切反应的影响 | 第13页 |
| 1.3.2 TEV蛋白酶的酶切效率效率调控 | 第13-14页 |
| 1.3.3 酶切效率检测手段 | 第14-15页 |
| 1.4 脂基化修饰对多肽穿膜性能的影响 | 第15-16页 |
| 1.5 本论文拟研究的科学问题的提出 | 第16-18页 |
| 第2章 磷酸化修饰对TEV蛋白酶底物性质的影响 | 第18-37页 |
| 2.1 本章引言 | 第18页 |
| 2.2 传感器的设计原理 | 第18-20页 |
| 2.2.1 酶切传感器的设计 | 第18-19页 |
| 2.2.2 g-C_3N_4表面功能化修饰 | 第19-20页 |
| 2.3 实验部分 | 第20-24页 |
| 2.3.1 实验试剂 | 第20页 |
| 2.3.2 实验仪器 | 第20页 |
| 2.3.3 实验中涉及的多肽序列 | 第20-21页 |
| 2.3.4 实验操作步骤 | 第21-24页 |
| 2.4 实验结果 | 第24-36页 |
| 2.4.1 多肽的合成与表征 | 第24-26页 |
| 2.4.2 g-C_3N_4作为淬灭剂 | 第26-27页 |
| 2.4.3 双荧光淬灭的发现 | 第27-29页 |
| 2.4.4 磷酸化修饰动态调控TEV蛋白酶水解过程 | 第29-31页 |
| 2.4.5 HPLC和MS监测酶切反应 | 第31-33页 |
| 2.4.6 双荧光淬灭的机理探索 | 第33-36页 |
| 2.5 本章小结 | 第36-37页 |
| 第3章 脂基修饰对多肽穿膜性能的影响 | 第37-43页 |
| 3.1 本章引言 | 第37页 |
| 3.2 实验部分 | 第37-39页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第37页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第37页 |
| 3.2.3 实验操作步骤 | 第37-39页 |
| 3.3 实验结果 | 第39-41页 |
| 3.3.1 多肽的合成与表征 | 第39-40页 |
| 3.3.2 Pep-OMe 4 的跨膜现象 | 第40-41页 |
| 3.3.3 脂基修饰对Pep-OMe 4 跨膜性能的影响 | 第41页 |
| 3.4 本章小结 | 第41-43页 |
| 第4章 g-C_3N_4的生物学应用研究 | 第43-50页 |
| 4.1 本章引言 | 第43页 |
| 4.2 实验部分 | 第43-45页 |
| 4.2.1 主要溶液配置 | 第43页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第43-44页 |
| 4.2.3 实验操作步骤 | 第44-45页 |
| 4.3 实验结果 | 第45-49页 |
| 4.3.1 g-C_3N_4的荧光性能 | 第45-46页 |
| 4.3.2 g-C_3N_4的形貌 | 第46页 |
| 4.3.3 g-C_3N_4的细胞毒性 | 第46-47页 |
| 4.3.4 g-C_3N_4的跨膜效果 | 第47页 |
| 4.3.5 g-C_3N_4作为药物的载体 | 第47-49页 |
| 4.4 本章小结 | 第49-50页 |
| 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-55页 |
| 致谢 | 第55-57页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第57页 |