| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 缩略词 | 第8-13页 |
| 1 文献综述 | 第13-41页 |
| 1.1 UV-B辐射对植物生长发育的影响 | 第14-21页 |
| 1.1.1 UV-B辐照对植物表型形态建成的影响 | 第15-16页 |
| 1.1.2 UV-B辐照对对植物生理生化代谢的影响 | 第16-18页 |
| 1.1.3 UV-B辐照对植物DNA与基因表达模式的影响 | 第18-19页 |
| 1.1.4 植物对UV-B辐射的感知和响应 | 第19-21页 |
| 1.2 He-Ne激光的抗逆防护机制 | 第21-25页 |
| 1.2.1 He-Ne激光的特点及其生物效应机制 | 第21-23页 |
| 1.2.2 He-Ne激光在生命科学领域中的应用 | 第23-25页 |
| 1.3 植物叶绿体蛋白质组学的研究进展 | 第25-33页 |
| 1.3.1 蛋白质组学的研究概述 | 第27-28页 |
| 1.3.2 蛋白质组学的相关研究技术 | 第28-30页 |
| 1.3.3 植物蛋白质组学 | 第30-31页 |
| 1.3.4 叶绿体蛋白质组学研究 | 第31-33页 |
| 1.4 植物抗逆机理的研究进展 | 第33-39页 |
| 1.4.1 常用的基因克隆方法 | 第34-39页 |
| 1.4.2 抗逆基因的功能分析 | 第39页 |
| 1.5 研究意义及主要研究内容 | 第39-41页 |
| 1.5.1 研究内容及意义 | 第39-40页 |
| 1.5.2 研究技术路线 | 第40-41页 |
| 2 He-Ne激光与增强UV-B辐射后小麦幼苗叶片组织显微结构及叶绿体超微结构变化 | 第41-51页 |
| 2.1 引言 | 第41页 |
| 2.2 材料与方法 | 第41-45页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第41-42页 |
| 2.2.2 试剂 | 第42页 |
| 2.2.3 主要仪器及科研软件 | 第42页 |
| 2.2.4 实验方法 | 第42-45页 |
| 2.3 结果与分析 | 第45-50页 |
| 2.3.1 不同处理对小麦幼苗生长参数的影响 | 第45-46页 |
| 2.3.2 不同处理后小麦幼苗叶片表观组织显微结构 | 第46页 |
| 2.3.3 不同处理后小麦幼苗叶肉细胞显微结构 | 第46-47页 |
| 2.3.4 小麦幼苗原生质体制备与叶绿体原位观察 | 第47页 |
| 2.3.5 不同处理后小麦幼苗叶绿体超微结构差异 | 第47-50页 |
| 2.4 小结 | 第50-51页 |
| 3 He-Ne激光与UV-B辐射下小麦幼苗叶绿体的光合作用 | 第51-65页 |
| 3.1 引言 | 第51页 |
| 3.2 材料与方法 | 第51-56页 |
| 3.2.1 植物材料 | 第51页 |
| 3.2.2 材料的培养及处理 | 第51-52页 |
| 3.2.3 仪器设备及软件 | 第52页 |
| 3.2.4 完整叶绿体的制备与检测 | 第52-53页 |
| 3.2.5 小麦幼苗叶绿体光合色素含量的测定 | 第53页 |
| 3.2.6 活性氧的检测与原位染色观察 | 第53-54页 |
| 3.2.7 叶绿体抗氧化保护酶活性测定 | 第54-55页 |
| 3.2.8 叶绿素荧光参数的测定 | 第55页 |
| 3.2.9 叶绿体ATP酶活性及ATP含量的检测 | 第55-56页 |
| 3.3 结果与分析 | 第56-62页 |
| 3.3.1 小麦幼苗生长参数的变化 | 第56页 |
| 3.3.2 小麦幼苗的光合生理参数 | 第56-58页 |
| 3.3.3 小麦幼苗叶片的快速光响应曲线 | 第58页 |
| 3.3.4 小麦幼苗的快速叶绿素荧光诱导动力学曲线 | 第58-59页 |
| 3.3.5 小麦幼苗叶绿体活性氧水平的变化 | 第59-60页 |
| 3.3.6 叶绿体ATP酶活性和ATP含量的变化 | 第60-62页 |
| 3.4 小结 | 第62-65页 |
| 4 小麦幼苗叶绿体蛋白质组学研究 | 第65-99页 |
| 4.1 引言 | 第65-66页 |
| 4.2 材料与方法 | 第66-70页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第66页 |
| 4.2.2 试剂配置 | 第66-67页 |
| 4.2.3 主要仪器及科研软件 | 第67页 |
| 4.2.4 实验方法 | 第67-70页 |
| 4.3 结果与分析 | 第70-87页 |
| 4.3.1 完整叶绿体制备与纯化 | 第70页 |
| 4.3.2 叶绿体蛋白的提取与定量 | 第70-71页 |
| 4.3.3 蛋白双向电泳结果 | 第71-74页 |
| 4.3.4 双向电泳凝胶图像分析 | 第74-78页 |
| 4.3.5 差异表达蛋白质的质谱分析及检索 | 第78-82页 |
| 4.3.6 差异蛋白的分类注释与功能分析 | 第82-86页 |
| 4.3.7 生物信息学方法预测部分差异蛋白质的结构 | 第86-87页 |
| 4.4 小结 | 第87-99页 |
| 4.4.1 关于实验过程中的一些要点 | 第87-90页 |
| 4.4.2 已鉴定的差异蛋白质的功能分析 | 第90-99页 |
| 5 差异蛋白基因表达验证与基因克隆 | 第99-109页 |
| 5.1 引言 | 第99页 |
| 5.2 材料与方法 | 第99-103页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第99页 |
| 5.2.2 试剂配置 | 第99页 |
| 5.2.3 主要仪器与科研软件 | 第99-100页 |
| 5.2.4 实验方法 | 第100-103页 |
| 5.3 结果与分析 | 第103-107页 |
| 5.3.1 检测RNA的纯度和完整度 | 第103-104页 |
| 5.3.2 差异蛋白基因的实时荧光定量PCR | 第104-107页 |
| 5.3.3 UV-B辐射响应基因的克隆 | 第107页 |
| 5.4 小结 | 第107-109页 |
| 6 讨论 | 第109-117页 |
| 6.1 He-Ne激光缓解了UV-B辐射增强对小麦叶绿体产生氧化胁迫 | 第109-111页 |
| 6.2 He-Ne激光缓解了UV-B辐射增强对小麦叶绿体光合作用抑制效应 | 第111-113页 |
| 6.3 He-Ne激光加强了小麦幼苗叶绿体能量产生和物质代谢 | 第113页 |
| 6.4 He-Ne激光对UV-B辐射增强胁迫下小麦叶绿体胁迫响应与防御蛋白 | 第113-117页 |
| 7 结论 | 第117-119页 |
| 参考文献 | 第119-133页 |
| 附录 | 第133-135页 |
| 致谢 | 第135页 |
