摘要 | 第6-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
第一章 前言 | 第15-25页 |
1.1 水体中内分泌干扰物的污染概况 | 第15-22页 |
1.1.1 水体中内分泌干扰物的污染现状 | 第15-16页 |
1.1.2 内分泌干扰物污染的来源 | 第16-17页 |
1.1.3 内分泌干扰物污染的危害 | 第17-18页 |
1.1.4 水中内分泌干扰物污染处理方法的研究进展 | 第18-21页 |
1.1.5 水环境中的一些典型内分泌干扰物质 | 第21-22页 |
1.2 本课题的研究目的意义和研究内容 | 第22-25页 |
1.2.1 论文研究目的及意义 | 第22-23页 |
1.2.2 论文的主要研究内容 | 第23页 |
1.2.3 技术路线图 | 第23-25页 |
第二章 HPLC法测定水中壬基酚、双酚S、双酚F和四氯双酚A | 第25-30页 |
2.1 实验材料和仪器 | 第25-26页 |
2.1.1 仪器设备 | 第25页 |
2.1.2 实验材料和药品 | 第25-26页 |
2.2 实验方法 | 第26-27页 |
2.2.1 标准液的配制 | 第26页 |
2.2.2 高效液相色谱参数条件的选择 | 第26页 |
2.2.3 样品的前处理 | 第26页 |
2.2.4 标准曲线的绘制 | 第26-27页 |
2.2.5 方法的稳定性和回收率测定 | 第27页 |
2.3 结果与分析 | 第27-29页 |
2.3.1 色谱条件的选择 | 第27-29页 |
2.3.2 四种污染物标准曲线的建立 | 第29页 |
2.3.3 检测限和回收率的测定结果 | 第29页 |
2.4 结论 | 第29-30页 |
第三章 天然水体中微生物对NP和BPF的去除研究 | 第30-40页 |
3.1 实验材料与仪器 | 第30-31页 |
3.1.1 实验材料 | 第30页 |
3.1.2 实验药品 | 第30页 |
3.1.3 实验仪器 | 第30-31页 |
3.2 实验方法 | 第31-33页 |
3.2.1 天然水体中NP和BPF的光解去除研究 | 第31页 |
3.2.2 天然水体中NP和BPF的原位微生物去除研究 | 第31-32页 |
3.2.3 不同天然水体中微生物群落交换后对NP和BPF的去除研究 | 第32页 |
3.2.4 限氧处理对天然水体中NP和BPF的去除的影响 | 第32页 |
3.2.5 通过添加氮磷和不同碳源比较天然水体中NP和BPF的去除效果 | 第32-33页 |
3.2.6 混合污染对天然水体中NP和BPF的去除影响 | 第33页 |
3.2.7 数据的统计分析 | 第33页 |
3.3 结果及分析 | 第33-39页 |
3.3.1 天然水体中NP和BPF的光解去除研究结果 | 第33-34页 |
3.3.2 天然水体中原位微生物对NP和BPF的去除 | 第34-35页 |
3.3.3 不同天然水体中微生物群落交换后对NP和BPF的去除结果的影响 | 第35-37页 |
3.3.4 限氧处理对天然水体中NP和BPF的去除的影响 | 第37页 |
3.3.5 添加氮磷和不同碳源比较天然水体对NP和BPF的去除效果影响 | 第37-38页 |
3.3.6 混合污染对天然水体中NP和BPF的去除影响 | 第38-39页 |
3.4 结论 | 第39-40页 |
第四章 沉水植物体系对水体中NP和BPF的去除研究 | 第40-49页 |
4.1 实验材料与仪器 | 第40-41页 |
4.1.1 实验材料 | 第40页 |
4.1.2 实验药品 | 第40页 |
4.1.3 实验仪器 | 第40-41页 |
4.2 实验方法 | 第41-42页 |
4.2.1 筛选高效降解水体中NP和BPF的沉水植物 | 第41页 |
4.2.2 沉水植物与其附生细菌对NP降解转化的贡献研究 | 第41页 |
4.2.3 高效降解沉水植物金鱼藻、狐尾藻无菌苗0~8天降解NP的动态实验 | 第41-42页 |
4.2.4 探究沉水植物体内过氧化物酶对NP、BPF的降解作用 | 第42页 |
4.2.5 数据的统计分析 | 第42页 |
4.3 结果及分析 | 第42-48页 |
4.3.1 筛选高效降解NP和BPF的沉水植物结果 | 第42-43页 |
4.3.2 沉水植物及其附生细菌对NP的降解转化贡献 | 第43-45页 |
4.3.3 高效降解沉水植物金鱼藻、狐尾藻无菌苗0~8天降解NP的动态实验结果 | 第45-46页 |
4.3.4 验证沉水植物体内过氧化物酶对NP和BPF的降解作用效果 | 第46-48页 |
4.4 结论 | 第48-49页 |
第五章 自来水体中BPS和TCBPA活性炭吸附去除研究 | 第49-67页 |
5.1 实验材料与仪器 | 第49-50页 |
5.1.1 实验材料 | 第49页 |
5.1.2 实验仪器 | 第49-50页 |
5.2 实验方法 | 第50-53页 |
5.2.1 污染物储备液的配制 | 第50页 |
5.2.2 炭种选择炭投加量确定 | 第50页 |
5.2.3 接触时间对吸附实验的影响 | 第50页 |
5.2.4 温度对吸附实验的影响 | 第50-51页 |
5.2.5 污染物的初始浓度对吸附实验的影响 | 第51页 |
5.2.6 pH对吸附实验的影响 | 第51页 |
5.2.7 活性炭对BPS和TCBA的吸附在自来水和超纯水中的差异 | 第51页 |
5.2.8 不同背景离子存在对吸附实验的影响 | 第51-52页 |
5.2.9 有机成分(腐殖酸)对吸附实验的影响 | 第52页 |
5.2.10 活性炭吸附BPS的傅里叶变换红外光谱实验 | 第52页 |
5.2.11 滤水壶实验 | 第52-53页 |
5.2.12 数据分析 | 第53页 |
5.3 实验结果及分析 | 第53-66页 |
5.3.1 炭种选择和活性炭投加量确定 | 第53页 |
5.3.2 粉末状活性炭对BPS和TCBPA的吸附动力学实验结果 | 第53-56页 |
5.3.3 粉末状活性炭吸附BPS和TCBPA的吸附热力学实验结果 | 第56-59页 |
5.3.4 温度对活性炭BPS和TCBPA吸附的影响及吸附焓变(△H)分析 | 第59-60页 |
5.3.5 pH对活性炭吸附BPS和TCBPA的影响 | 第60-61页 |
5.3.6 活性炭吸附BPS和TCBPA的在自来水和超纯水中的差异 | 第61-62页 |
5.3.7 不同离子对活性炭吸附BPS和TCBPA的影响 | 第62-63页 |
5.3.8 有机成分(腐殖酸)对活性炭吸附BPS和TCBPA的影响 | 第63页 |
5.3.9 傅里叶变换红外光谱实验结果 | 第63-65页 |
5.3.10 滤水壶实验结果 | 第65-66页 |
5.4 结论 | 第66-67页 |
参考文献 | 第67-75页 |
致谢 | 第75页 |