猪瘟病毒感染细胞的代谢组学及葡萄糖促进猪瘟病毒增殖的研究
英文缩略词表 | 第5-7页 |
摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-11页 |
前言 | 第12-14页 |
第一章 猪瘟病毒感染细胞的代谢组学研究 | 第14-41页 |
1 实验材料 | 第14-15页 |
1.1 细胞与病毒 | 第14页 |
1.2 主要试剂 | 第14页 |
1.3 主要仪器 | 第14-15页 |
2 实验方法 | 第15-18页 |
2.1 细胞培养 | 第15页 |
2.2 代谢组学分组安排 | 第15-16页 |
2.3 色谱串联质谱分析样品信息 | 第16-17页 |
2.4 数据处理及分析 | 第17-18页 |
2.5 代谢物鉴定 | 第18页 |
3 实验结果 | 第18-39页 |
3.1 原始谱图可视化检查 | 第18-20页 |
3.2 数据预处理 | 第20页 |
3.3 数据多维统计分析 | 第20-26页 |
3.4 OPLS-DA模型准确性评价 | 第26页 |
3.5 代谢物鉴定 | 第26-35页 |
3.6 差异代谢物聚类分析 | 第35-37页 |
3.7 差异代谢物的通路分析 | 第37-39页 |
4 小结与讨论 | 第39-41页 |
第二章 葡萄糖促进猪瘟病毒增殖的研究 | 第41-57页 |
1 实验材料 | 第41-43页 |
1.1 细胞与病毒 | 第41页 |
1.2 主要试剂 | 第41-42页 |
1.3 主要仪器 | 第42-43页 |
1.4 试剂配制 | 第43页 |
2 实验方法 | 第43-50页 |
2.1 细胞培养 | 第43-44页 |
2.2 葡萄糖和谷氨酰胺对猪瘟病毒增殖的影响 | 第44-45页 |
2.3 猪瘟病毒TCID_(50)测定 | 第45页 |
2.4 提取RNA及反转录 | 第45-46页 |
2.5 猪瘟病毒基因组拷贝数测定 | 第46页 |
2.6 细胞总蛋白提取 | 第46-47页 |
2.7 蛋白浓度测定 | 第47页 |
2.8 猪瘟病毒N~(pro)蛋白表达的检测 | 第47页 |
2.9 猪瘟病毒感染对ST细胞摄入葡萄糖的影响 | 第47-48页 |
2.10 猪瘟病毒对糖酵解相关酶基因表达的影响 | 第48-50页 |
2.11 猪瘟病毒对PKM2表达影响 | 第50页 |
3 实验结果 | 第50-55页 |
3.1 葡萄糖剥夺抑制猪瘟病毒的增殖 | 第50-51页 |
3.2 细胞增殖能力检测 | 第51-52页 |
3.3 葡萄糖回补促进猪瘟病毒增殖 | 第52页 |
3.4 2-DG抑制猪瘟病毒的增殖 | 第52-53页 |
3.5 猪瘟病毒感染促进ST细胞对葡萄糖的摄取 | 第53页 |
3.6 猪瘟病毒感染对糖酵解关键酶表达影响 | 第53-54页 |
3.7 猪瘟病毒感染不影响PKM2的表达 | 第54-55页 |
4 小结与讨论 | 第55-57页 |
结论 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-63页 |
个人简介 | 第63-64页 |
致谢 | 第64页 |