| 符号说明 | 第4-8页 |
| 中文摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9页 |
| 1 前言 | 第10-18页 |
| 1.1 研究目的与意义 | 第10页 |
| 1.2 国内外研究进展 | 第10-17页 |
| 1.2.1 蔬菜作物的果型研究进展 | 第10-13页 |
| 1.2.2 转录组测序技术 | 第13-14页 |
| 1.2.3 植物激素在果实发育中的作用 | 第14-17页 |
| 1.2.4 MADS-box在果实发育中的作用 | 第17页 |
| 1.3 研究内容及技术路线 | 第17-18页 |
| 1.3.1 研究内容 | 第17-18页 |
| 1.3.2 技术路线 | 第18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第18-19页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第18页 |
| 2.1.2 菌株与质粒 | 第18页 |
| 2.1.3 酶及生化试剂 | 第18-19页 |
| 2.1.4 引物 | 第19页 |
| 2.1.5 遗传转化组织培养基及营养液配方 | 第19页 |
| 2.2 试验方法 | 第19-33页 |
| 2.2.1 材料种植 | 第19页 |
| 2.2.2 石蜡切片观察细胞大小 | 第19-22页 |
| 2.2.3 质构仪检测黄瓜果实果皮硬度及脆度 | 第22-23页 |
| 2.2.4 突变体与野生型差异表达基因的定量验证 | 第23-24页 |
| 2.2.5 黄瓜果皮纤维素与半纤维素含量测定 | 第24-26页 |
| 2.2.6 基因Csa1G039900、Csa1G051580过表达载体的构建 | 第26-30页 |
| 2.2.7 番茄遗传转化及转基因植株的获得 | 第30-31页 |
| 2.2.8 植物激素提取及含量测定 | 第31-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-48页 |
| 3.1 黄瓜短果突变体表型鉴定 | 第33-36页 |
| 3.1.1 黄瓜短果突变体性状的新发现 | 第33-34页 |
| 3.1.2 黄瓜短果突变体果实细胞体积变大，数目减少 | 第34-35页 |
| 3.1.3 黄瓜短果突变体果实硬度脆度变大 | 第35-36页 |
| 3.1.4 黄瓜短果突变体果实形成由单孟德尔因子调控 | 第36页 |
| 3.2 黄瓜短果突变体与野生型的转录组测序 | 第36-46页 |
| 3.2.1 转录组测序质量评估 | 第36-37页 |
| 3.2.2 差异表达基因个数统计 | 第37页 |
| 3.2.3 Gene Ontology功能富集分析 | 第37-39页 |
| 3.2.4 差异表达基因所在的KEGG路径 | 第39页 |
| 3.2.5 RNA-Seq测序结果的验证 | 第39-44页 |
| 3.2.5.1 植物激素信号转导途径相关的表达差异基因 | 第39-41页 |
| 3.2.5.2 赤霉素生物合成途径的差异表达基因 | 第41-42页 |
| 3.2.5.3 木质素生物合成途径的差异表达基因 | 第42-43页 |
| 3.2.5.4 类胡萝卜素合成途径的差异表达基因 | 第43-44页 |
| 3.2.6 与植物激素相关的转录因子的荧光定量验证 | 第44-45页 |
| 3.2.7 黄瓜短果突变体与野生型不同发育时期果实的内源激素含量不同 | 第45-46页 |
| 3.3 MADS-box基因过表达载体的构建及遗传转化 | 第46-48页 |
| 3.3.1 Csa1G039900、Csa1G051580基因的表达及过表达载体的构建 | 第46-47页 |
| 3.3.2 Csa1G039900、Csa1G051580在番茄中的遗传转化 | 第47-48页 |
| 4 讨论 | 第48-52页 |
| 4.1 黄瓜短果基因具有一因多效性 | 第48页 |
| 4.2 短果突变体细胞体积变大，数目减少 | 第48-49页 |
| 4.3 植物激素影响细胞的大小和数目 | 第49-50页 |
| 4.4 MADS-box基因在短果突变体与野生型中有显著的表达差异 | 第50-52页 |
| 5 结论 | 第52-53页 |
| 6 参考文献 | 第53-60页 |
| 7 附录 | 第60-63页 |
| 8 致谢 | 第63-64页 |
| 9 硕士期间发表的文章 | 第64页 |
