| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 第一章 前言 | 第14-22页 |
| 1.1 雷公藤概述 | 第14-16页 |
| 1.1.1 雷公藤的资源分布 | 第14页 |
| 1.1.2 雷公藤的主要物质成分 | 第14-16页 |
| 1.2 植物内生菌研究进展 | 第16-19页 |
| 1.2.1 植物内生菌的定义 | 第16页 |
| 1.2.2 植物内生菌的分布 | 第16-17页 |
| 1.2.3 植物内生菌的生物学功能 | 第17-19页 |
| 1.3 内生菌与药用植物之间的关系 | 第19-20页 |
| 1.4 研究目的与意义 | 第20页 |
| 1.5 研究内容及技术路线 | 第20-22页 |
| 第二章 雷公藤内生细菌、内生真菌及其组合的植物促生效应研究 | 第22-30页 |
| 2.1 试验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.1 供试菌种 | 第22-23页 |
| 2.1.2 仪器设备 | 第23页 |
| 2.2 试验方法 | 第23-24页 |
| 2.2.1 促生指标的测定 | 第23页 |
| 2.2.2 种子的萌发实验 | 第23-24页 |
| 2.2.3 根系活力的测定 | 第24页 |
| 2.2.4 叶绿素含量的测定 | 第24页 |
| 2.2.5 数据分析 | 第24页 |
| 2.3 结果与分析 | 第24-28页 |
| 2.3.1 菌株及其组合的促生特性 | 第24-25页 |
| 2.3.2 菌株及其组合对种子萌发及生长的影响 | 第25-27页 |
| 2.3.3 菌株及其组合对幼苗根系活力的影响 | 第27页 |
| 2.3.4 菌株及其组合对幼苗叶绿素含量的影响 | 第27-28页 |
| 2.4 小结与讨论 | 第28-30页 |
| 第三章 内生真菌和内生细菌及其组合与雷公藤细胞悬浮共培养的生理生化特性 | 第30-41页 |
| 3.1 试验材料 | 第30-31页 |
| 3.1.1 样品来源 | 第30-31页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第31页 |
| 3.2 试验方法 | 第31-32页 |
| 3.2.1 菌株的活化培养 | 第31页 |
| 3.2.2 细胞悬浮培养 | 第31页 |
| 3.2.3 细胞干重的测定 | 第31页 |
| 3.2.4 培养液pH值的测定 | 第31-32页 |
| 3.2.5 总糖含量的测定 | 第32页 |
| 3.2.6 生理生化指标的测定 | 第32页 |
| 3.2.7 数据分析 | 第32页 |
| 3.3 结果与分析 | 第32-39页 |
| 3.3.1 对细胞生长的影响 | 第32-33页 |
| 3.3.2 对培养液pH值的影响 | 第33-34页 |
| 3.3.3 对培养液总糖消耗的影响 | 第34-35页 |
| 3.3.4 对可溶性蛋白含量的影响 | 第35页 |
| 3.3.5 对POD活力的影响 | 第35-36页 |
| 3.3.6 对CAT活力的影响 | 第36-37页 |
| 3.3.7 对SOD活力的影响 | 第37-38页 |
| 3.3.8 对MDA含量的影响 | 第38-39页 |
| 3.4 小结与讨论 | 第39-41页 |
| 第四章 不同内生菌诱导子对雷公藤细胞悬浮生长及生理生化特性的影响 | 第41-60页 |
| 4.1 试验材料 | 第41页 |
| 4.2 主要仪器 | 第41-42页 |
| 4.3 试验方法 | 第42-43页 |
| 4.3.1 细胞悬浮培养 | 第42页 |
| 4.3.2 不同内生菌诱导子的制备 | 第42页 |
| 4.3.3 悬浮细胞鲜重的测定 | 第42页 |
| 4.3.4 培养液pH值的测定 | 第42页 |
| 4.3.5 培养液电导率的测定 | 第42-43页 |
| 4.3.6 总糖含量的测定 | 第43页 |
| 4.3.7 生理生化指标的测定 | 第43页 |
| 4.4 结果与分析 | 第43-59页 |
| 4.4.1 对细胞生长的影响 | 第43-45页 |
| 4.4.2 对培养液pH值的影响 | 第45-47页 |
| 4.4.3 对培养液电导率的影响 | 第47-49页 |
| 4.4.4 对培养液总糖消耗的影响 | 第49-51页 |
| 4.4.5 对细胞POD活力的影响 | 第51-53页 |
| 4.4.6 对细胞CAT活力的影响 | 第53-55页 |
| 4.4.7 对细胞SOD活力的影响 | 第55-57页 |
| 4.4.8 对细胞MDA含量的影响 | 第57-59页 |
| 4.5 小结与讨论 | 第59-60页 |
| 第五章 内生真菌和内生细菌及其组合对雷公藤组培苗生长及生理生化特征的影响 | 第60-72页 |
| 5.1 试验材料 | 第60页 |
| 5.1.1 样品来源 | 第60页 |
| 5.1.2 主要仪器 | 第60页 |
| 5.2 试验方法 | 第60-62页 |
| 5.2.1 目标菌株以及组合菌株菌悬液的制备 | 第60-61页 |
| 5.2.2 营养液的制备 | 第61页 |
| 5.2.3 不同内生菌与雷公藤组培苗共生体系的建立 | 第61页 |
| 5.2.4 生长指标的测定 | 第61页 |
| 5.2.5 叶绿素含量的测定 | 第61页 |
| 5.2.6 蛋白质含量的测定 | 第61页 |
| 5.2.7 苯丙氨酸解氨酶(PAL)活力的测定 | 第61-62页 |
| 5.2.8 硝酸还原酶(NR)活力的测定 | 第62页 |
| 5.2.9 CAT活力的测定 | 第62页 |
| 5.2.10 MDA含量的测定 | 第62页 |
| 5.2.11 超氧阴离子自由基(O~(2-))活力的测定 | 第62页 |
| 5.3 结果与分析 | 第62-70页 |
| 5.3.1 内生菌及其组合对雷公藤组培苗生长指标的影响 | 第62-63页 |
| 5.3.2 内生菌及其组合对雷公藤组培苗叶绿素含量的影响 | 第63-64页 |
| 5.3.3 内生菌及其组合对雷公藤组培苗可溶性糖含量的影响 | 第64-65页 |
| 5.3.4 内生菌及其组合对雷公藤组培苗蛋白质含量的影响 | 第65-66页 |
| 5.3.5 内生菌及其组合对雷公藤组培苗PAL活力的影响 | 第66-67页 |
| 5.3.6 内生菌及其组合对雷公藤组培苗NR活力的影响 | 第67页 |
| 5.3.7 内生菌及其组合对雷公藤组培苗CAT活力的影响 | 第67-68页 |
| 5.3.8 内生菌及其组合对雷公藤组培苗MDA含量的影响 | 第68-69页 |
| 5.3.9 内生菌及其组合对雷公藤组培苗超氧阴离子自由基活力的影响 | 第69-70页 |
| 5.4 小结与讨论 | 第70-72页 |
| 第六章 内生真菌和内生细菌及其组合对雷公藤组培苗营养吸收及甲素、红素积累的影响 | 第72-80页 |
| 6.1 试验材料 | 第72页 |
| 6.1.1 样品来源 | 第72页 |
| 6.1.2 主要仪器 | 第72页 |
| 6.2 试验方法 | 第72-74页 |
| 6.2.1 植物样品处理 | 第72-73页 |
| 6.2.2 营养元素的测定 | 第73页 |
| 6.2.3 甲素和红素含量的测定 | 第73-74页 |
| 6.3 结果与分析 | 第74-78页 |
| 6.3.1 内生菌及其组合对雷公藤组培苗C吸收的影响 | 第74页 |
| 6.3.2 内生菌及其组合对雷公藤组培苗N吸收的影响 | 第74-75页 |
| 6.3.3 内生菌及其组合对雷公藤组培苗P吸收的影响 | 第75-76页 |
| 6.3.4 内生菌及其组合对雷公藤组培苗K吸收的影响 | 第76-77页 |
| 6.3.5 内生菌及其组合对雷公藤组培苗产甲素的影响 | 第77页 |
| 6.3.6 内生菌及其组合对雷公藤组培苗产红素的影响 | 第77-78页 |
| 6.4 小结与讨论 | 第78-80页 |
| 参考文献 | 第80-89页 |
| 攻读学位期间的学术论文 | 第89-90页 |
| 致谢 | 第90页 |
