| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-20页 |
| 1.1 影响茶叶品质的关键化学成分 | 第12-14页 |
| 1.1.1 茶树中的游离氨基酸 | 第12-13页 |
| 1.1.2 儿茶素研究进展 | 第13-14页 |
| 1.1.3 咖啡碱研究进展 | 第14页 |
| 1.2 莽草酸途径研究进展 | 第14-16页 |
| 1.2.1 莽草酸途径 | 第14-15页 |
| 1.2.2 莽草酸途径相关酶研究进展 | 第15-16页 |
| 1.3 '白叶1号'白化现象研究进展 | 第16-17页 |
| 1.3.1 '白叶1号'白化情况概述 | 第16-17页 |
| 1.3.2 '白叶1号'白化期间相关生理变化研究进展 | 第17页 |
| 1.4 莽草酸途径对茶树品质的影响 | 第17-19页 |
| 1.5 技术路线图 | 第19-20页 |
| 第二章 '白叶1号'白化前期、白化期和返绿期叶绿体及主要生化组分变化研究 | 第20-32页 |
| 2.1 材料与方法 | 第21-24页 |
| 2.1.1 材料 | 第21页 |
| 2.1.1.1 实验材料 | 第21页 |
| 2.1.1.2 实验试剂 | 第21页 |
| 2.1.1.3 主要实验仪器 | 第21页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第21-24页 |
| 2.1.2.1 '白叶1号'白化前期、白化期与返绿期叶绿体结构电镜观察 | 第21-22页 |
| 2.1.2.2 '白叶1号'白化前期、白化期和返绿期叶绿素含量变化 | 第22页 |
| 2.1.2.3 '白叶1号'白化前期、白化期和返绿期茶氨酸含量变化 | 第22-23页 |
| 2.1.2.4 '白叶1号'白化前期、白化期和返绿期儿茶素含量变化 | 第23-24页 |
| 2.1.2.5 '白叶1号'白化前期、白化期和返绿期氨基酸含量变化 | 第24页 |
| 2.1.2.6 数据分析 | 第24页 |
| 2.2 实验结果及分析 | 第24-30页 |
| 2.2.1 '白叶1号'白化前期、白化期和返绿期叶绿体结构电镜观察 | 第24-25页 |
| 2.2.2 '白叶1号'白化前期、白化期和返绿期叶绿素含量变化检测 | 第25-26页 |
| 2.2.3 '白叶1号'白化前期、白化期和返绿期含水量变化检测 | 第26页 |
| 2.2.4 '白叶1号'白化前期、白化期和返绿期茶氨酸含量变化 | 第26-27页 |
| 2.2.5 '白叶1号'白化前期、白化期和返绿期儿茶素含量变化 | 第27-30页 |
| 2.2.6 '白叶1号'白化前期、白化期和返绿期氨基酸含量变化 | 第30页 |
| 2.3 讨论 | 第30-32页 |
| 第三章 茶树磷酸烯醇式丙酮酸转运子基因的克隆与分析 | 第32-58页 |
| 3.1 材料与方法 | 第32-47页 |
| 3.1.1 材料 | 第32-33页 |
| 3.1.1.1 实验材料 | 第32-33页 |
| 3.1.1.2 实验试剂 | 第33页 |
| 3.1.1.3 主要实验仪器 | 第33页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第33-47页 |
| 3.1.2.1 茶树总RNA提取 | 第33-34页 |
| 3.1.2.2 单链cDNA的合成 | 第34-35页 |
| 3.1.2.3 获得目的基因中间片段 | 第35-38页 |
| 3.1.2.4 3'RACE | 第38-39页 |
| 3.1.2.5 5'RACE | 第39-41页 |
| 3.1.2.6 高保真获得基因ORF | 第41-42页 |
| 3.1.2.7 组织荧光定量与实时荧光定量 | 第42-43页 |
| 3.1.2.8 茶树CsPPT基因表达蛋白亚细胞定位 | 第43-47页 |
| 3.2 实验结果与分析 | 第47-56页 |
| 3.2.1 茶树组织总RNA的提取 | 第47-48页 |
| 3.2.2 茶树CsPPT基因克隆 | 第48-53页 |
| 3.2.2.1 CsPPT基因ORF的获得 | 第48-49页 |
| 3.2.2.2 CsPPT基因的生物信息学分析 | 第49-53页 |
| 3.2.3 CsPPT基因组织荧光定量结果与分析 | 第53-54页 |
| 3.2.4 CsPPT白化前期、白化期和返绿期荧光定量结果与分析 | 第54页 |
| 3.2.5 CsPPT基因表达蛋白亚细胞定位 | 第54-56页 |
| 3.3 讨论 | 第56-58页 |
| 第四章 茶树DAHP合成酶基因的克隆与表达性分析 | 第58-72页 |
| 4.1 材料与方法 | 第58-62页 |
| 4.1.1 材料 | 第58-59页 |
| 4.1.1.1 实验材料 | 第58-59页 |
| 4.1.1.2 实验试剂 | 第59页 |
| 4.1.1.3 主要实验仪器 | 第59页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第59-62页 |
| 4.1.2.1 茶树总RNA提取 | 第59页 |
| 4.1.2.2 单链cDNA的合成 | 第59页 |
| 4.1.2.3 获得目的基因中间片段 | 第59-60页 |
| 4.1.2.4 3'RACE和5'RACE | 第60-61页 |
| 4.1.2.5 高保真获得基因ORF | 第61页 |
| 4.1.2.6 组织荧光定量与实时荧光定量 | 第61页 |
| 4.1.2.7 茶树CsDAHP基因表达蛋白亚细胞定位 | 第61-62页 |
| 4.2 实验结果与分析 | 第62-70页 |
| 4.2.1 茶树组织总RNA的提取 | 第62页 |
| 4.2.2 茶树CsDAHP基因克隆 | 第62-67页 |
| 4.2.2.1 CsDAHP基因ORF的获得 | 第62-63页 |
| 4.2.2.2 CsDAHP基因的生物信息学分析 | 第63-67页 |
| 4.2.3 CsDAHP基因组织荧光定量结果与分析 | 第67-68页 |
| 4.2.4 CsDAHP白化前期、白化期和返绿期荧光定量结果与分析 | 第68页 |
| 4.2.5 CsDAHP基因表达蛋白亚细胞定位 | 第68-70页 |
| 4.3 讨论 | 第70-72页 |
| 第五章 茶树莽草酸脱氢酶和分支酸变位酶的克隆与表达分析 | 第72-86页 |
| 5.1 材料与方法 | 第72-75页 |
| 5.1.1 材料 | 第72-73页 |
| 5.1.1.1 实验材料 | 第72-73页 |
| 5.1.1.2 实验试剂 | 第73页 |
| 5.1.1.3 主要实验仪器 | 第73页 |
| 5.1.2 实验方法 | 第73-75页 |
| 5.1.2.1 茶树总RNA提取 | 第73页 |
| 5.1.2.2 单链cDNA的合成 | 第73-74页 |
| 5.1.2.3 获得目的基因中间片段 | 第74页 |
| 5.1.2.4 3'RACE和5'RACE | 第74页 |
| 5.1.2.5 高保真获得基因ORF | 第74页 |
| 5.1.2.6 组织荧光定量与实时荧光定量 | 第74-75页 |
| 5.2 实验结果与分析 | 第75-84页 |
| 5.2.1 茶树组织总RNA的提取 | 第75页 |
| 5.2.2 茶树CsSDH和CsCS基因克隆 | 第75-82页 |
| 5.2.2.1 CsSDH和CsCS基因ORF的获得 | 第75-77页 |
| 5.2.2.2 CsSDH和CsCS基因的生物信息学分析 | 第77-82页 |
| 5.2.3 CsSDH和CsCS基因组织荧光定量结果与分析 | 第82-83页 |
| 5.2.4 CsDAHP和CsCS白化前期、白化期和返绿期荧光定量结果与分析 | 第83-84页 |
| 5.3 讨论 | 第84-86页 |
| 全文总结 | 第86-88页 |
| 参考文献 | 第88-94页 |
| 致谢 | 第94-96页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第96-98页 |
| 附录 | 第98-99页 |
