| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 1 绪论 | 第9-14页 |
| ·课题背景 | 第9-10页 |
| ·恶性肿瘤简介 | 第9页 |
| ·细胞凋亡简介 | 第9-10页 |
| ·天然抗肿瘤药物研究进展 | 第10页 |
| ·绵马素PB的研究概况 | 第10-12页 |
| ·香鳞毛蕨简介 | 第10-11页 |
| ·香鳞毛蕨中的有效成分 | 第11页 |
| ·香鳞毛蕨主要成份的药理活性 | 第11-12页 |
| ·立题依据 | 第12-14页 |
| 2 绵马素PB体外抗肿瘤活性筛选 | 第14-20页 |
| ·引言 | 第14页 |
| ·实验仪器与材料 | 第14-16页 |
| ·细胞株 | 第14页 |
| ·实验仪器 | 第14页 |
| ·实验材料 | 第14-15页 |
| ·主要溶液配制 | 第15-16页 |
| ·实验方法与步骤 | 第16-17页 |
| ·细胞的复苏 | 第16页 |
| ·细胞的培养与传代 | 第16页 |
| ·MTT法检测绵马素PB对肿瘤细胞的增殖抑制作用 | 第16-17页 |
| ·细胞形态学的观察 | 第17页 |
| ·数据处理 | 第17页 |
| ·实验结果与讨论 | 第17-19页 |
| ·MTT法检测绵马素PB对多种肿瘤细胞增殖的抑制作用 | 第17-18页 |
| ·激光共聚交显微镜观察绵马素PB对HepG2细胞形态学的影响 | 第18-19页 |
| ·本章小结 | 第19-20页 |
| 3 绵马素PB诱导HepG2细胞发生凋亡 | 第20-30页 |
| ·引言 | 第20页 |
| ·实验仪器与材料 | 第20-21页 |
| ·细胞株 | 第20页 |
| ·实验仪器 | 第20-21页 |
| ·实验材料 | 第21页 |
| ·主要溶液配制 | 第21页 |
| ·实验方法与步骤 | 第21-23页 |
| ·罗丹明123(Rh123)染色法检测绵马素PB对HepG2细胞线粒体跨膜电位(△Ψm)的影响 | 第21-22页 |
| ·DNA琼脂糖凝胶电泳检测绵马素PB诱导HepG2细胞发生凋亡 | 第22页 |
| ·AnnexinV-FITC/PI双染检测绵马素PB对HepG2细胞凋亡率的影响 | 第22-23页 |
| ·结果与讨论 | 第23-29页 |
| ·绵马素PB对HepG2细胞凋亡率的影响 | 第23-25页 |
| ·绵马素PB诱导HepG2细胞凋亡引起DNA Ladder的产生 | 第25-26页 |
| ·绵马素PB对HepG2细胞凋亡率的影响 | 第26-29页 |
| ·本章小结 | 第29-30页 |
| 4 绵马素PB诱导HepG2细胞凋亡的分子机制 | 第30-42页 |
| ·引言 | 第30页 |
| ·实验仪器与材料 | 第30-33页 |
| ·细胞株 | 第30页 |
| ·实验仪器 | 第30-31页 |
| ·实验材料 | 第31-32页 |
| ·主要溶液配制 | 第32-33页 |
| ·实验方法与步骤 | 第33-35页 |
| ·激光共聚交显微镜观察渥曼青霉素(Wortmannin)对HepG2细胞形态学的影响 | 第33页 |
| ·AnnexinV-FITC/PI双染检测渥曼青霉素(Wortmannin)对HepG2细胞凋亡率的影响 | 第33-34页 |
| ·Western blot检测凋亡相关蛋白表达水平变化 | 第34-35页 |
| ·结果与讨论 | 第35-41页 |
| ·渥曼青霉素(Wortmannin)对HepG2细胞形态学的影响 | 第35-36页 |
| ·渥曼青霉素(Wortmannin)对HepG2细胞凋亡率的影响 | 第36-37页 |
| ·绵马素PB对于PI3K和p-Akt蛋白表达的影响 | 第37-39页 |
| ·绵马素PB对于p-GSK-3β和NAG-1蛋白表达的影响 | 第39-40页 |
| ·绵马素PB对于Caspase-3和PARP蛋白表达的影响 | 第40-41页 |
| ·本章小结 | 第41-42页 |
| 结论 | 第42-44页 |
| 参考文献 | 第44-49页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
