| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 1 文献综述 | 第10-18页 |
| ·盐角草的研究进展 | 第10-12页 |
| ·盐角草生物生态学特征 | 第10-11页 |
| ·盐角草的分布范围 | 第11页 |
| ·盐角草的作用和应用 | 第11-12页 |
| ·活性氧的形成和清除 | 第12-13页 |
| ·活性氧的形成 | 第12页 |
| ·活性氧的清除 | 第12-13页 |
| ·超氧化物歧化酶（SOD）的研究进展 | 第13-18页 |
| ·SOD的种类和分布 | 第14页 |
| ·SOD的结构特点和理化性质 | 第14-15页 |
| ·植物体内SOD与外界胁迫的关系 | 第15页 |
| ·SOD基因的表达调控 | 第15-16页 |
| ·SOD的应用 | 第16-17页 |
| ·SOD的研究意义 | 第17-18页 |
| 2 引言 | 第18-19页 |
| 3 材料和方法 | 第19-34页 |
| ·实验材料 | 第19-20页 |
| ·植物材料 | 第19页 |
| ·菌株与载体 | 第19页 |
| ·试剂 | 第19页 |
| ·溶液配制方法 | 第19-20页 |
| ·实验仪器 | 第20页 |
| ·实验方法 | 第20-34页 |
| ·盐角草总RNA的提取 | 第20-21页 |
| ·改良的CTAB-LiCl提取法 | 第20-21页 |
| ·试剂盒提取盐角草总RNA | 第21页 |
| ·盐角草cDNA的合成和纯化 | 第21-22页 |
| ·SeCZS基因中间片段的获得 | 第22页 |
| ·PCR产物电泳检测 | 第22页 |
| ·电泳条带的胶回收纯化 | 第22-23页 |
| ·连接和转化 | 第23-24页 |
| ·DNA片段与载体连接 | 第23页 |
| ·转化大肠杆菌 | 第23-24页 |
| ·菌液PCR检测和测序 | 第24-25页 |
| ·RACE扩增 | 第25-29页 |
| ·3’-RACE | 第25-26页 |
| ·5’-RACE | 第26-29页 |
| ·SeCZS基因全长序列获得及生物信息学分析 | 第29-30页 |
| ·SeCZS基因的原核表达载体的构建 | 第30-31页 |
| ·pMD19T-SeCZS质粒和pETDuet-1质粒的提取 | 第30-31页 |
| ·重组质粒的双酶切 | 第31页 |
| ·SeCZS基因片段与pETduet-1载体片段相连接 | 第31页 |
| ·重组表达菌获得和菌液PCR | 第31页 |
| ·SeCZS基因的诱导表达 | 第31-33页 |
| ·重组表达菌耐盐性分析 | 第33-34页 |
| 4 结果与分析 | 第34-43页 |
| ·盐角草总RNA的提取 | 第34页 |
| ·SeCZS基因的克隆 | 第34-36页 |
| ·SeCZS基因中间片段的获得 | 第34-35页 |
| ·SeCZS基因3’和5’末端序列的获得 | 第35-36页 |
| ·SeCZS基因cDNA全长的获得 | 第36页 |
| ·SeCZS基因的生物信息学分析 | 第36-38页 |
| ·盐角草Cu/Zn-SOD蛋白序列的同源性分析 | 第38-40页 |
| ·SeCZS基因的原核诱导表达 | 第40-41页 |
| ·SeCZS基因耐盐性鉴定 | 第41-43页 |
| 5 讨论 | 第43-44页 |
| 6 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| 附录 | 第49-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 作者简介 | 第52页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第52页 |