| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-28页 |
| 1. 软骨组织工程综述 | 第10-24页 |
| ·种子细胞 | 第11-16页 |
| ·软骨组织工程支架材料 | 第16-22页 |
| ·软骨组织工程生长因子 | 第22-24页 |
| 2. 可注射性水凝胶在组织工程中的应用 | 第24-25页 |
| 3. 结冷胶：一种新型组织工程材料 | 第25-26页 |
| 4. 研究目的和实验设计 | 第26-28页 |
| 第二章 低凝结温度结冷胶配制及特性研究 | 第28-39页 |
| 1 材料 | 第28-29页 |
| ·主要仪器和设备 | 第28页 |
| ·主要试剂 | 第28-29页 |
| ·实验动物 | 第29页 |
| ·试剂配制 | 第29页 |
| 2 方法 | 第29-32页 |
| ·天然结冷胶的凝结条件测定 | 第29-30页 |
| ·改进的结冷胶配制策略 | 第30页 |
| ·改进后结冷胶的凝结条件测定 | 第30页 |
| ·水凝胶冷冻干燥 | 第30-31页 |
| ·软骨细胞的分离培养 | 第31页 |
| ·水凝胶细胞毒性试验 | 第31页 |
| ·凝胶微观结构扫描电子显微镜观察 | 第31-32页 |
| ·不同形状凝胶的构建 | 第32页 |
| 3 结果 | 第32-37页 |
| ·天然结冷胶的凝结条件测定 | 第32-33页 |
| ·改进后结冷胶的凝结条件测定 | 第33页 |
| ·水凝胶冷冻干燥 | 第33-34页 |
| ·MTT细胞毒性实验 | 第34-35页 |
| ·扫描电子显微镜观察 | 第35-36页 |
| ·不同形状凝胶的构建 | 第36-37页 |
| 4. 讨论 | 第37-38页 |
| 5. 小结 | 第38-39页 |
| 第三章 可注射水凝胶的体外培养 | 第39-48页 |
| 1 材料 | 第39-40页 |
| ·主要仪器和设备 | 第39页 |
| ·主要试剂 | 第39页 |
| ·实验动物 | 第39页 |
| ·试剂配制 | 第39-40页 |
| 2 方法 | 第40-42页 |
| ·结冷胶水凝胶的配制 | 第40页 |
| ·软骨细胞的分离培养 | 第40页 |
| ·结冷胶珠状凝胶包裹软骨细胞体外培养 | 第40页 |
| ·珠状凝胶CFDA-SE/PI染色 | 第40-41页 |
| ·珠状凝胶MTT细胞活力测试 | 第41页 |
| ·总RNA提取 | 第41页 |
| ·RT-PCR | 第41-42页 |
| 3 结果 | 第42-45页 |
| ·软骨细胞在凝胶中生长状态的观察 | 第42-44页 |
| ·珠状凝胶MTT细胞活力测试 | 第44页 |
| ·总RNA提取 | 第44-45页 |
| ·RT-PCR | 第45页 |
| 4 讨论 | 第45-47页 |
| 5 小结 | 第47-48页 |
| 第四章 结冷胶水凝胶构建可注射组织工程软骨 | 第48-61页 |
| 1 材料 | 第48-49页 |
| ·主要仪器和设备 | 第48页 |
| ·主要试剂 | 第48页 |
| ·实验动物 | 第48-49页 |
| ·试剂配制 | 第49页 |
| 2 方法 | 第49-51页 |
| ·结冷胶水凝胶的配制 | 第49页 |
| ·软骨细胞的分离培养 | 第49页 |
| ·结冷胶水凝胶混合软骨细胞构建可注射水凝胶的体内实验 | 第49页 |
| ·三维CT | 第49页 |
| ·总RNA提取及RT-PCR | 第49-50页 |
| ·组织学染色与Ⅱ型胶原免疫组织化学染色 | 第50页 |
| ·硫酸葡萄糖胺聚糖(sGAG) | 第50页 |
| ·新生组织压力测试 | 第50-51页 |
| 3 结果 | 第51-58页 |
| ·三维CT | 第51页 |
| ·组织大体形态观察 | 第51-52页 |
| ·组织学染色 | 第52-55页 |
| ·Ⅱ型胶原蛋白免疫组织化学染色 | 第55-56页 |
| ·总RNA提取及PCR电泳结果 | 第56页 |
| ·硫酸葡萄糖胺聚糖(sGAG)定量分析 | 第56-57页 |
| ·新生组织压力测试 | 第57-58页 |
| 4 讨论 | 第58-59页 |
| 5 小结 | 第59-61页 |
| 本研究全文总结 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-72页 |
| 致谢 | 第72页 |