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猪繁殖与呼吸综合征病毒MN基因的原核表达探索及M-ELISA诊断方法的建立

论文独创性声明第1页
关于论文使用授权的声明第3-7页
中文摘要第7-8页
英文摘要第8-9页
前言第9-21页
一 材料与方法第21-33页
 1 实验材料和主要仪器第21-23页
   ·实验材料第21-23页
     ·质粒和菌株第21页
     ·主要试剂第21-23页
   ·主要仪器第23页
 2 实验方法第23-33页
   ·重组表达质粒pBVMN的构建与鉴定第23-28页
     ·MN基因片断的制备第24-26页
       ·重组质粒菌pMD18-T-MN的培养第24页
       ·重组质粒pMD18-T-MN的提取第24-25页
       ·重组质粒pMD18-T-MN的鉴定第25页
       ·MN基因片段的获取第25-26页
     ·表达质粒pBV220的制备第26页
       ·表达质粒pBV220的鉴定第26页
       ·表达载体pBV220的制备第26页
     ·感受态大肠杆菌DH5α的制备第26-27页
     ·表达载体pBV MN的构建第27页
     ·重组质粒菌的筛选第27页
     ·重组质粒pBV MN的鉴定第27-28页
       ·单酶切鉴定第27页
       ·双酶切鉴定第27-28页
       ·MN基因序列测定第28页
   ·MN基因在大肠杆菌中的表达和鉴定第28-29页
     ·兔抗PRRSV的制备第28页
     ·MN基因在大肠杆菌中的诱导表达及最佳诱导条件的选择第28页
     ·表达产物的SDS—PAGE电泳和Western—blotting分析第28-29页
   ·PRRSV-SCQ M蛋白用于诊断抗原的研究第29-33页
     ·M蛋白的获得第29页
     ·M蛋白含量的测定第29页
     ·酶标SPA的制备第29-30页
     ·待测血清中抗E.coli成分的除去第30页
       ·正常E.coli裂解物上清的制备第30页
       ·以正常E.coli成分吸附待测血清中的抗E.coli抗体第30页
     ·M—ELISA最佳反应条件的选择第30页
       ·酶标SPA工作浓度的选择第30页
       ·M抗原最佳包被浓度和血清最佳稀释度的选择第30页
     ·M-ELISA方法第30-31页
     ·M—ELISA特异性试验第31页
     ·M—ELISA重复性试验第31页
     ·与IDEXX公司试剂盒比较试验第31-32页
     ·本地血清检测第32-33页
二 结果与分析第33-43页
 1 重组表达质粒pBVMN的构建与鉴定第33-36页
   ·重组质粒pMD18-T-MN的鉴定第33页
   ·表达质粒pBV220的鉴定第33-34页
   ·重组质粒pBV MN的鉴定第34-36页
     ·重组质粒pBV MN的酶切鉴定第34-35页
     ·MN基因序列测定第35-36页
 2 MN基因在大肠杆菌中的表达和定第36-38页
   ·兔抗PRRSV效价测定第36页
   ·MN基因在大肠杆菌中的诱导表达及最佳诱导条件的选择第36-37页
   ·表达产物的SDS—PAGE电泳和Western—blotting分析第37-38页
 3 PRRSV-SCQ M蛋白用于诊断抗原的研究第38-43页
   ·M蛋白含量的测定第38页
   ·酶标SPA工作浓度的选择第38页
   ·M抗原最佳包被浓度和血清最佳稀释度的选择第38-39页
   ·判定标准的确定第39-40页
   ·ELISA特异性试验第40页
     ·竞争性抑制试验第40页
     ·交叉试验第40页
   ·M—ELISA重复性试验第40-41页
     ·批内重复试验第40-41页
     ·批间重复试验第41页
   ·与IDEXX公司试剂盒比较试验第41-42页
   ·本地血清检测第42-43页
三 讨论第43-49页
 1 表达载体pBV220第43页
 2 重组表达质粒的构建和鉴定第43-44页
 3 MN基因的诱导表达第44-46页
 4 蛋白的纯化第46页
 5 M-ELISA方法和样品检测第46-49页
四 结论第49-50页
参考文献第50-56页
致谢第56-57页
发表文章目录第57页

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