牛精原干细胞制备和体外培养的研究
| 中文摘要 | 第1-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 1 引言 | 第11-18页 |
| ·精原细胞的生物学特性 | 第11-13页 |
| ·形态学特征 | 第11页 |
| ·特异性标志分子 | 第11-12页 |
| ·精原细胞的自增殖能力和分化潜能 | 第12页 |
| ·精原细胞具有有丝分裂休眠期 | 第12-13页 |
| ·精原细胞具有再生能力 | 第13页 |
| ·精原细胞具有迁移能力 | 第13页 |
| ·精原细胞的鉴别方法 | 第13-14页 |
| ·通过形态学特点进行鉴定 | 第13-14页 |
| ·通过c-kit 受体进行鉴定 | 第14页 |
| ·通过精原细胞的移植进行鉴定 | 第14页 |
| ·精原细胞的研究进展 | 第14-15页 |
| ·体外培养的研究进展 | 第14-15页 |
| ·分离纯化的研究进展 | 第15页 |
| ·精原细胞的应用前景 | 第15-17页 |
| ·精子发生机制的研究 | 第16页 |
| ·精原细胞在医学领域中的应用 | 第16页 |
| ·用于生产转基因动物 | 第16-17页 |
| ·研究课题的提出 | 第17-18页 |
| 2. 材料与方法 | 第18-25页 |
| ·实验材料 | 第18页 |
| ·实验动物 | 第18页 |
| ·实验试剂 | 第18页 |
| ·主要仪器设备 | 第18页 |
| ·常用试剂配制 | 第18-20页 |
| ·四种血清浓度培养液的配制 | 第18-19页 |
| ·消化液的配制 | 第19页 |
| ·终止液的配制 | 第19页 |
| ·不同密度Percoll 分离液的配制 | 第19-20页 |
| ·Percoll 冲悬液 | 第20页 |
| ·200mmol/L 的谷氨酰胺的配制 | 第20页 |
| ·精原细胞的制备及培养 | 第20-25页 |
| ·睾丸组织块的体外培养 | 第20页 |
| ·曲细精管段的体外培养 | 第20-21页 |
| ·精原细胞悬液的制备 | 第21页 |
| ·精原细胞的分离 | 第21页 |
| ·精原细胞的接种培养 | 第21-22页 |
| ·光镜样品的制备和观察 | 第22-23页 |
| ·透射电镜样品的制备和观察 | 第23-24页 |
| ·数据统计分析 | 第24-25页 |
| 3 结果 | 第25-34页 |
| ·光镜组织学观察 | 第25-26页 |
| ·新生牛睾丸组织 | 第25页 |
| ·组织块培养一周 | 第25页 |
| ·组织块培养两周 | 第25-26页 |
| ·电镜组织学观察 | 第26-28页 |
| ·新生牛睾丸 | 第26-27页 |
| ·组织块培养一周 | 第27页 |
| ·组织块培养两周 | 第27-28页 |
| ·曲精细管段培养 | 第28页 |
| ·长期法培养 | 第28页 |
| ·精原细胞的体外培养 | 第28-34页 |
| ·精原细胞的生长 | 第28-31页 |
| ·睾丸体细胞的生长 | 第31页 |
| ·不同血清浓度培养液中精原细胞的比例 | 第31-32页 |
| ·不同培养方法中的精原细胞 | 第32-34页 |
| 4. 讨论 | 第34-38页 |
| ·新生牛睾丸和培养后组织块的光镜组织学观察 | 第34-35页 |
| ·新生牛睾丸和培养后组织块的电镜组织学观察 | 第35页 |
| ·体外培养过程中的精原细胞 | 第35-38页 |
| 5 结论 | 第38-39页 |
| 致谢 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-46页 |
| 附录 | 第46-60页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第60页 |
