独创性声明 | 第1页 |
关于论文使用授权的说明 | 第3-4页 |
缩写词 | 第4-5页 |
摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-14页 |
1 引言 | 第14-30页 |
1.1 叶绿体 | 第15-17页 |
1.2 植物幼苗脱黄化过程中的光受体 | 第17-18页 |
1.2.1 phys在植物幼苗脱黄化过程中的作用 | 第17-18页 |
1.2.2 crys在植物幼苗脱黄化过程中的作用 | 第18页 |
1.3 植物幼苗脱黄化过程的质体信号 | 第18-22页 |
1.3.1 氧化还原信号 | 第19-20页 |
1.3.2 Mg-ProtoⅨ作为质体和细胞核之间的信号分子 | 第20页 |
1.3.3 四吡咯调控机制 | 第20-21页 |
1.3.4 质体信号调节核基因表达的多样性 | 第21-22页 |
1.4 植物幼苗脱黄化过程POR的生理作用 | 第22-24页 |
1.5 植物幼苗发育的光调控 | 第24-28页 |
1.5.1 Pchlide的光还原和Chl的形成 | 第24-26页 |
1.5.2 细胞的分化 | 第26页 |
1.5.3 下胚轴生长的抑制和子叶的展开 | 第26-27页 |
1.5.4 叶绿体的发育 | 第27页 |
1.5.5 PSI的组装 | 第27-28页 |
1.6 本研究目的和内容 | 第28-30页 |
1.6.1 研究目的 | 第28-29页 |
1.6.2 研究内容 | 第29-30页 |
2 实验材料及方法 | 第30-38页 |
2.1 实验材料 | 第30页 |
2.2 光源的选择 | 第30-32页 |
2.3 实验材料的处理 | 第32页 |
2.3.1 光照处理 | 第32页 |
2.3.2 抗生素处理 | 第32页 |
2.4 实验方法 | 第32-35页 |
2.4.1 Pchlide和Chlide含量的测定 | 第32-33页 |
2.4.2 Chl a和Chl b含量的测定 | 第33页 |
2.4.3 蛋白质含量的测定 | 第33页 |
2.4.4 质体或叶绿体膜的分离 | 第33页 |
2.4.5 膜蛋白复合物制备 | 第33页 |
2.4.6 色素蛋白复合物的分离 | 第33-34页 |
2.4.7 叶绿体和质体膜蛋白多肽分离 | 第34页 |
2.4.8 PSⅠ光化学活性的测定 | 第34页 |
2.4.9 PSⅡ光化学活性的测定 | 第34页 |
2.4.10 光合速率的测定 | 第34页 |
2.4.11 叶绿素荧光参数的测定 | 第34-35页 |
2.4.12 电镜样品的制备与观察 | 第35页 |
2.5 光纤光谱仪 | 第35-38页 |
2.5.1 S2000微型光纤光谱仪 | 第35页 |
2.5.2 吸收光谱的测定 | 第35-36页 |
2.5.3 导数光谱的计算 | 第36页 |
2.5.4 P700氧化还原测定 | 第36-38页 |
3 实验结果与分析 | 第38-76页 |
3.1 绿豆幼苗叶片Pchlide的光还原 | 第38-43页 |
3.1.1 连续光照下幼苗叶片Pchlide的光还原 | 第38-39页 |
3.1.2 脉冲光下幼苗叶片Pchlide的光还原 | 第39-41页 |
3.1.3 抗生素对幼苗叶片Pchlide光还原的影响 | 第41-43页 |
3.1.3.1 Sm对幼苗叶片Pchlide光还原的影响 | 第41-42页 |
3.1.3.2 CH处理对幼苗叶片Pchlide光还原的影响 | 第42-43页 |
3.2 绿豆幼苗叶片Chl的生物合成 | 第43-47页 |
3.2.1 连续光照下幼苗叶片Chl含量的变化 | 第43-44页 |
3.2.2 脉冲光下幼苗叶片Chl含量的变化 | 第44-45页 |
3.2.3 抗生素对幼苗叶片Chl合成的影响 | 第45-47页 |
3.2.3.1 Sm处理对幼苗叶片Chl合成的影响 | 第45-46页 |
3.2.3.2 CH处理对幼苗叶片Chl合成的影响 | 第46-47页 |
3.3 绿豆幼苗叶片Pchlide光还原in vivo | 第47-52页 |
3.3.1 室温下幼苗叶片吸收光谱in vivo | 第47-49页 |
3.3.2 不同光照时间Pchlide光还原in vivo | 第49-51页 |
3.3.3 光强对Pchlide光还原吸收光谱的影响 | 第51-52页 |
3.4 绿豆幼苗叶片光合特性的研究 | 第52-56页 |
3.4.1 幼苗叶片脱黄化过程光化学活性的变化 | 第52-54页 |
3.4.1.1 光对幼苗叶片PS活性的影响 | 第52-53页 |
3.4.1.2 抗生素对幼苗叶片PS活性的影响 | 第53-54页 |
3.4.2 幼苗叶片脱黄化过程光合速率的变化 | 第54-56页 |
3.4.2.1 光对幼苗叶片光合速率的影响 | 第54-55页 |
3.4.2.2 抗生素对幼苗叶片光合速率的影响 | 第55-56页 |
3.5 绿豆幼苗质体发育过程蛋白质的形成 | 第56-60页 |
3.5.1 幼苗质体发育过程色素复合蛋白质的形成 | 第56-57页 |
3.5.1.1 光对幼苗质体色素蛋白质形成的影响 | 第56-57页 |
3.5.1.2 抗生素对幼苗质体色素蛋白质形成的影响 | 第57页 |
3.5.2 幼苗叶片发育过程质体蛋白质多肽的变化 | 第57-60页 |
3.5.2.1 光对幼苗质体发育过程蛋白质多肽变化的影响 | 第57-59页 |
3.5.2.2 抗生素对质体发育过程蛋白质变化的影响 | 第59-60页 |
3.6 绿豆幼苗叶片的荧光特性 | 第60-66页 |
3.6.1 幼苗叶片脱黄化过程荧光的变化 | 第60-61页 |
3.6.1.1 幼苗叶片发育过程F_0和Fm的变化 | 第61页 |
3.6.1.2 幼苗叶片发育过程Fv/Fm的变化 | 第61页 |
3.6.2 幼苗叶片发育过程荧光动力学分析 | 第61-63页 |
3.6.3 闪光对幼苗叶片荧光的影响 | 第63-64页 |
3.6.3.1 连续3次闪光对幼苗叶片荧光诱导动力学曲线的影响 | 第63-64页 |
3.6.3.2 1次/1h闪光对幼苗叶片荧光诱导动力学曲线的影响 | 第64页 |
3.6.4 抗生素对幼苗叶片荧光的影响 | 第64-66页 |
3.6.4.1 Sm对幼苗叶片荧光诱导动力学曲线的影响 | 第64-66页 |
3.6.4.2 CH对幼苗叶片荧光诱导动力学曲线的影响 | 第66页 |
3.7 光诱导绿豆幼苗叶片820NM吸收光谱的变化 | 第66-72页 |
3.7.1 光诱导幼苗叶片820nm吸收光谱的动力学 | 第66页 |
3.7.2 连续光照对幼苗叶片820nm吸收光谱的影响 | 第66-67页 |
3.7.3 闪光对幼苗叶片820nm吸收变化的影响 | 第67-71页 |
3.7.3.1 连续3次白闪光对幼苗叶片820nm吸收的影响 | 第67-68页 |
3.7.3.2 1次/1h白闪光对幼苗叶片820nm吸收的影响 | 第68页 |
3.7.3.3 1次/1h红闪光对幼苗叶片820nm吸收的影响 | 第68-69页 |
3.7.3.4 弱红闪光对幼苗叶片820nm吸收的影响 | 第69-70页 |
3.7.3.5 弱蓝闪光对幼苗叶片820nm吸收的影响 | 第70-71页 |
3.7.3.6 白闪光加远红光对幼苗叶片820nm吸收的影响 | 第71页 |
3.7.4 抗生素对幼苗叶片820nm吸收变化的影响 | 第71-72页 |
3.7.4.1 Sm对幼苗叶片820nm吸收变化的影响 | 第71-72页 |
3.7.4.2 CH对幼苗叶片820nm吸收变化的影响 | 第72页 |
3.8 绿豆幼苗叶绿体的发育 | 第72-76页 |
3.8.1 光对幼苗质体发育的影响 | 第72-73页 |
3.8.2 抗生素对幼苗质体发育的影响 | 第73-76页 |
4 讨论 | 第76-84页 |
4.1 绿豆幼苗脱黄化初期的光反应 | 第76-77页 |
4.2 绿豆幼苗脱黄化初期Pchlide光转化的调控 | 第77-79页 |
4.3 绿豆幼苗脱黄化初期生理生化反应对光的响应 | 第79-80页 |
4.4 绿豆幼苗脱黄化发育初期吸收光谱特性 | 第80-81页 |
4.5 绿豆幼苗脱黄化过程叶绿体发育初期光信号调控途径 | 第81-84页 |
5 结论 | 第84-86页 |
参考文献 | 第86-103页 |
个人简历 | 第103页 |
博士学位在读期间获得成果目录清单 | 第103-104页 |
导师简历 | 第104-105页 |
致谢 | 第105页 |