| 摘要 | 第1-16页 |
| ABSTRACT | 第16-19页 |
| 缩略语表 | 第19-20页 |
| 药品、试剂与仪器 | 第20-24页 |
| 药品与试剂 | 第20-21页 |
| 仪器 | 第21-24页 |
| 前言 | 第24-34页 |
| 第一章 模型药物布洛芬理化性质与离体角膜透过性的研究 | 第34-43页 |
| ·实验动物 | 第34页 |
| ·布洛芬理化性质的测定 | 第34-37页 |
| ·分析方法 | 第34-35页 |
| ·溶解度测定 | 第35页 |
| ·表观油水分配系数 | 第35-36页 |
| ·结果与讨论 | 第36-37页 |
| ·布洛芬离体角膜透过性研究 | 第37-41页 |
| ·试验装置 | 第37-38页 |
| ·介质的配制 | 第38页 |
| ·离体角膜的制备 | 第38页 |
| ·离体角膜透过性实验方法 | 第38页 |
| ·分析方法的建立 | 第38-40页 |
| ·数据处理 | 第40页 |
| ·角膜水化值的测定 | 第40-41页 |
| ·实验结果 | 第41页 |
| ·本章小结 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-43页 |
| 第二章 眼用布洛芬阳离子脂质体的研究 | 第43-58页 |
| ·包封率测定方法的建立 | 第43-44页 |
| ·乙醇破坏完全性实验 | 第43-44页 |
| ·凝胶柱对脂质体截留率实验 | 第44页 |
| ·洗脱曲线的绘制 | 第44页 |
| ·制备方法的选择 | 第44-46页 |
| ·薄膜分散法 | 第44-45页 |
| ·乙醇注入法 | 第45页 |
| ·超声法 | 第45-46页 |
| ·布洛芬阳离子脂质体的处方筛选 | 第46-49页 |
| ·药脂比对包封率的影响 | 第46-47页 |
| ·磷脂与胆固醇的比例对包封率的影响 | 第47页 |
| ·十八胺用量对包封率的影响 | 第47-48页 |
| ·乙醇挥发温度对包封率的影响 | 第48页 |
| ·正交试验筛选与优化处方 | 第48-49页 |
| ·自制Ibu-CL理化性质的考察 | 第49-51页 |
| ·脂质体形态的观察 | 第49-50页 |
| ·脂质体粒径的测定 | 第50页 |
| ·脂质体Zeta电位的测定 | 第50-51页 |
| ·脂质体稳定性的考察 | 第51页 |
| ·布洛芬阳离子脂质体体外释放研究 | 第51-53页 |
| ·体外释放的测定 | 第51-52页 |
| ·布洛芬阳离子脂质体的离体角膜透过性实验 | 第52-53页 |
| ·在体消除动力学的研究 | 第53-56页 |
| ·本章小节 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-58页 |
| 第三章 眼用布洛芬微乳给药系统的研究 | 第58-72页 |
| ·微乳的处方设计原则 | 第58-60页 |
| ·油相的选择 | 第59页 |
| ·表面活性剂的选择 | 第59-60页 |
| ·助表面活性剂的选择 | 第60页 |
| ·微乳的制备方法及伪三元相图 | 第60页 |
| ·影响微乳形成的主要因素 | 第60-67页 |
| ·油相对微乳形成的影响 | 第60-63页 |
| ·表面活性剂对微乳形成的影响 | 第63-65页 |
| ·助表面活性剂对微乳形成的影响 | 第65-67页 |
| ·微乳离体角膜透过性实验及最优处方的确定 | 第67-68页 |
| ·渗透压的调整和灭菌 | 第68-69页 |
| ·微乳的理化性质考察 | 第69-70页 |
| ·形态观察 | 第69页 |
| ·在体刺激性评价 | 第69-70页 |
| ·本章小结 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-72页 |
| 第四章 眼用布洛芬纳米结构脂质载体的研究 | 第72-92页 |
| ·制备工艺的考察 | 第72-74页 |
| ·制备方法的选择 | 第72页 |
| ·温度的选择 | 第72页 |
| ·油相、水相及表面活性剂的加入方式 | 第72-73页 |
| ·水相滴加速度 | 第73页 |
| ·乳化时间 | 第73页 |
| ·超声功率 | 第73-74页 |
| ·超声时间 | 第74页 |
| ·冷却条件的选择 | 第74页 |
| ·灭菌工艺的选择 | 第74页 |
| ·包封率的测定 | 第74-75页 |
| ·处方筛选 | 第75-79页 |
| ·处方筛选的原则 | 第75-76页 |
| ·脂质材料种类的选择 | 第76-78页 |
| ·乳化剂种类的选择 | 第78页 |
| ·添加剂的选择 | 第78-79页 |
| ·脂质浓度的选择 | 第79页 |
| ·正交设计优化处方 | 第79-81页 |
| ·最优处方和制备工艺 | 第81页 |
| ·Ibu-NLC性质研究 | 第81-88页 |
| ·NLC的形态观察 | 第81-82页 |
| ·包封率、粒径和zeta电位 | 第82-83页 |
| ·稳定性 | 第83页 |
| ·离体角膜透过性实验 | 第83-85页 |
| ·在体刺激性评价 | 第85页 |
| ·初步眼组织分布实验 | 第85-88页 |
| ·本章小节 | 第88-90页 |
| 参考文献 | 第90-92页 |
| 第五章 眼用纳米结构脂质载体细胞毒性及摄取机制研究 | 第92-105页 |
| ·样品的制备 | 第92-93页 |
| ·细胞的常规培养 | 第93页 |
| ·细胞复苏 | 第93页 |
| ·细胞传代 | 第93页 |
| ·生长曲线的绘制和最佳接种浓度的确定 | 第93-95页 |
| ·MTT测定NLC抑制增殖效应 | 第95-98页 |
| ·RdB-NLC的细胞摄取实验 | 第98-104页 |
| ·荧光扫描确定罗丹明最大激发波长和发射波长 | 第98页 |
| ·荧光正置显微镜定性观察RdB-NLC的摄取过程 | 第98-100页 |
| ·激光共聚焦显微镜观察RdB-NLC的细胞摄取过程 | 第100-104页 |
| 参考文献 | 第104-105页 |
| 第六章 眼用布洛芬阳离子脂质体、微乳和纳米结构脂质载体三种制剂在体微渗析实验 | 第105-121页 |
| ·实验动物 | 第105-106页 |
| ·实验方法 | 第106-110页 |
| ·分析方法的建立 | 第106-108页 |
| ·探针的植入 | 第108-109页 |
| ·在体回收率的测定 | 第109页 |
| ·布洛芬眼部给药系统的在体微渗析实验 | 第109页 |
| ·数据处理 | 第109-110页 |
| ·结果与讨论 | 第110-118页 |
| ·在体回收率的测定 | 第110-111页 |
| ·药动学研究 | 第111-118页 |
| ·本章小结 | 第118-119页 |
| 参考文献 | 第119-121页 |
| 第七章 眼用新型促渗剂PHARMASOLVE对药物角膜透过性的影响及机制探讨 | 第121-132页 |
| ·实验动物 | 第121页 |
| ·溶解度和分配系数的测定 | 第121页 |
| ·刺激性实验 | 第121-123页 |
| ·离体角膜透过性实验 | 第123页 |
| ·色谱条件 | 第123页 |
| ·Pharmasolve对四种药物角膜透过性的影响 | 第123页 |
| ·数据处理和角膜水化值的测定 | 第123页 |
| ·结果与讨沦 | 第123-130页 |
| ·溶解度实验结果 | 第123-124页 |
| ·刺激性实验结果 | 第124页 |
| ·Pharmasolve对四种药物角膜透过性的影响 | 第124-129页 |
| ·Pharmasolve对角膜水化值的影响 | 第129-130页 |
| ·本章小结 | 第130-131页 |
| 参考文献 | 第131-132页 |
| 全文结论 | 第132-135页 |
| 全文主要创新点 | 第135-136页 |
| 致谢 | 第136-137页 |
| 作者简介 | 第137-138页 |
