| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 1 前言 | 第11-12页 |
| 综述 | 第12-18页 |
| 参考文献 | 第17-18页 |
| 2 实验材料及研究方法 | 第18-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第18-22页 |
| 2.2 技术路线 | 第22-23页 |
| 2.3 外源性叔丁基过氧化氢影响成肌细胞的实验方法 | 第23-30页 |
| 2.3.1 C2C12成肌细胞培养 | 第23-24页 |
| 2.3.2 C2C12成肌细胞存活率MTT法 | 第24页 |
| 2.3.3 C2C12成肌细胞MDA检测 | 第24-25页 |
| 2.3.4 SDS-PAGE凝胶电泳 | 第25-26页 |
| 2.3.5 湿转电转印法 | 第26-27页 |
| 2.3.6 Western杂交 | 第27页 |
| 2.3.7 C2C12成肌细胞RT-PCR | 第27-30页 |
| 2.4 线粒体稳态影响成肌细胞分化中生物钟变化的实验方法 | 第30-33页 |
| 2.4.1 C2C12成肌细胞培养同2.3.1 | 第30页 |
| 2.4.2 C2C12成肌细胞siRNA OPA1条件 | 第30-32页 |
| 2.4.3 C2C12成肌细胞western blotting检测同2.3.4,2.3.5,2.3.6的方法,检测OPA1,Drp1,Bmal1 | 第32页 |
| 2.4.4 C2C12成肌细胞RT-PCR检测同2.3.7 | 第32页 |
| 2.4.5 C2C12成肌细胞膜电位检测 | 第32页 |
| 2.4.6 C2C12成肌细胞ROS检测 | 第32-33页 |
| 2.5 统计学原理 | 第33页 |
| 3 实验结果与分析 | 第33-65页 |
| 3.1 不同浓度叔丁基过氧化氢对C2C12细胞的存活率影响 | 第33-34页 |
| 3.2 不同浓度叔丁基过氧化氢作用C2C12细胞的MDA(丙二醛)检测 | 第34-35页 |
| 3.3 叔丁基过氧化氢作用成肌分化中分化标志因子MyoD的变化表达 | 第35-36页 |
| 3.4 叔丁基过氧化氢作用成肌分化中抗氧化性的表达 | 第36-38页 |
| 3.5 叔丁基过氧化氢作用成肌分化中线粒体能量代谢变化 | 第38-39页 |
| 3.6 叔丁基过氧化氢作用成肌分化中线粒体融合分裂蛋白表达 | 第39-45页 |
| 3.7 叔丁基过氧化氢作用成肌分化中生物合成的表达 | 第45-47页 |
| 3.8 叔丁基过氧化氢作用成肌分化中生物钟的表达 | 第47-48页 |
| 3.9 叔丁基过氧化氢作用成肌分化中OPA1剪切酶OMA1的表达 | 第48-49页 |
| 3.10 OPA1 siRNA的干扰片段的筛选 | 第49-50页 |
| 3.11 OPA1 siRNA,Drp1抑制剂作用后成肌分化中氧化应激的变化 | 第50-52页 |
| 3.12 OPA1 siRNA,Drp1抑制剂作用后成肌分化中线粒体能量代谢的表达 | 第52-54页 |
| 3.13 OPA1 siRNA后成肌分化中线粒体融合分裂的表达 | 第54-56页 |
| 3.14 OPA1 siRNA,Drp1抑制剂作用后成肌分化中线粒体生物合成基因表达水平 | 第56-57页 |
| 3.15 OPA1 siRNA,Drp1抑制剂作用后成肌分化中生物钟的表达变化 | 第57-58页 |
| 3.16 OPA1 siRNA,Drp1抑制剂作用后成肌分化的基因水平表达 | 第58-59页 |
| 3.17 讨论 | 第59-65页 |
| 4 结论与建议 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-70页 |
| 附件 | 第70-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
| 研究生个人简历 | 第72页 |
