中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
缩略语 | 第11-12页 |
前言 | 第12-16页 |
研究现状、成果 | 第12-14页 |
研究目的、方法 | 第14-16页 |
一、hSGLT1/2细胞的[(14)~C]-AMG摄取实验 | 第16-22页 |
1.1 对象与方法 | 第16-18页 |
1.1.1 试剂与仪器 | 第16页 |
1.1.2 实验方法 | 第16-18页 |
1.2 结果 | 第18-19页 |
1.3 讨论 | 第19-21页 |
1.3.1 细胞实验原理 | 第19-20页 |
1.3.2 细胞试验的准确性 | 第20页 |
1.3.3 选择性计算的意义 | 第20-21页 |
1.4 小结 | 第21-22页 |
二、化合物正常大鼠降血糖实验和尿排糖实验 | 第22-29页 |
2.1 对象和方法 | 第22-23页 |
2.1.1 实验材料 | 第22页 |
2.1.2 实验方法 | 第22-23页 |
2.2 结果 | 第23-26页 |
2.2.1 正常大鼠给药后尿量和尿糖 | 第23-25页 |
2.2.2 正常大鼠给药后血糖变化 | 第25-26页 |
2.3 讨论 | 第26-28页 |
2.3.1 实验指标的确定 | 第26-27页 |
2.3.2 尿糖实验中时间段的确定 | 第27页 |
2.3.3 实验结果讨论 | 第27-28页 |
2.4 小结 | 第28-29页 |
三、糖尿病模型大鼠长期灌胃给药药效实验 | 第29-35页 |
3.1 对象和方法 | 第29-30页 |
3.1.1 实验材料 | 第29页 |
3.1.2 实验方法 | 第29-30页 |
3.2 结果 | 第30-33页 |
3.2.1 糖尿病大鼠连续口服给药一个月后各项指标变化 | 第30-32页 |
3.2.2 链脲佐菌素诱导的糖尿病大鼠给药一个月后糖耐量 | 第32-33页 |
3.3 讨论 | 第33-34页 |
3.3.1 模型的选择 | 第33-34页 |
3.3.2 成模标准的确定 | 第34页 |
3.3.3 进行果糖胺测定的意义 | 第34页 |
3.3.4 试验中出现的问题 | 第34页 |
3.4 小结 | 第34-35页 |
四、化合物药物代谢动力学 | 第35-43页 |
4.1 对象和方法 | 第35-39页 |
4.1.1 试剂和仪器 | 第35页 |
4.1.2 检测条件 | 第35-38页 |
4.1.3 实验方法 | 第38-39页 |
4.2 结果 | 第39-41页 |
4.3 讨论 | 第41-42页 |
4.3.1 进行药代试验的意义 | 第41页 |
4.3.2 药代与药效分析 | 第41-42页 |
4.4 小结 | 第42-43页 |
五、小鼠初步毒性评价 | 第43-46页 |
5.1 对象和方法 | 第43页 |
5.1.1 实验材料 | 第43页 |
5.1.2 试验方法 | 第43页 |
5.2 结果 | 第43-44页 |
5.3 讨论 | 第44-45页 |
5.3.1 进行毒性实验的意义 | 第44页 |
5.3.2 毒性实验结果讨论 | 第44-45页 |
5.4 小结 | 第45-46页 |
六、大鼠口服长期毒性初步试验 | 第46-53页 |
6.1 对象和方法 | 第46-48页 |
6.1.1 实验对象 | 第46页 |
6.1.2 实验方法 | 第46-48页 |
6.2 结果 | 第48-50页 |
6.2.1 动物死亡情况 | 第48页 |
6.2.2 解剖发现毒性表现 | 第48页 |
6.2.3 体重变化 | 第48-49页 |
6.2.4 脏器指数 | 第49页 |
6.2.5 血液学检查 | 第49页 |
6.2.6 血液生化检查 | 第49页 |
6.2.7 大鼠连续给药一个月总体情况 | 第49-50页 |
6.3 讨论 | 第50-52页 |
6.3.1 剂量设定 | 第51页 |
6.3.2 大鼠各项指标 | 第51-52页 |
6.3.3 实验中的问题 | 第52页 |
6.4 小结 | 第52-53页 |
结论 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-58页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第58-59页 |
附录 | 第59-72页 |
综述 新型SGLT2抑制剂Empagliflozin | 第72-82页 |
综述参考文献 | 第80-82页 |
致谢 | 第82页 |