| 前言 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 英文单词缩写表 | 第12-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-14页 |
| 第2章 文献综述 | 第14-20页 |
| 2.1 EPCS 的生物学特性 | 第14-15页 |
| 2.1.1 EPCs 的来源及表面标志 | 第14页 |
| 2.1.2 EPCs 的动员、归巢和诱导分化 | 第14-15页 |
| 2.1.3 EPCs 的功能 | 第15页 |
| 2.2 EPCS 在缺血性脑血管病中的作用 | 第15-17页 |
| 2.2.1 EPCs 促进血管生长及内皮修复 | 第16-17页 |
| 2.2.2 EPCs 促进神经生长 | 第17页 |
| 2.3 EPCS 治疗缺血性脑血管病现状 | 第17-19页 |
| 2.3.1 EPCs 移植治疗脑缺血 | 第17-18页 |
| 2.3.2 EPCs 联合基因治疗 | 第18页 |
| 2.3.3 EPCs 在支架中的应用 | 第18-19页 |
| 2.4 结论与展望 | 第19-20页 |
| 第3章 材料与方法 | 第20-30页 |
| 3.1 实验材料 | 第20-23页 |
| 3.1.1 主要仪器和设备 | 第20-21页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第21页 |
| 3.1.3 溶液配制及使用方法 | 第21-22页 |
| 3.1.4 动物来源 | 第22-23页 |
| 3.2 大鼠骨髓 EPCS 的分离、培养和鉴定 | 第23-24页 |
| 3.2.1 大鼠骨髓单个核细胞的分离 | 第23页 |
| 3.2.2 免疫荧光细胞化学 | 第23-24页 |
| 3.3 动物模型的制备 | 第24-25页 |
| 3.3.1 线栓来源 | 第24页 |
| 3.3.2 大脑中动脉局灶性脑缺血模型的制备 | 第24-25页 |
| 3.4 脑梗死模型的判定 | 第25-27页 |
| 3.4.1 行为学判定 | 第25页 |
| 3.4.2 TTC 染色判定 | 第25页 |
| 3.4.3 大鼠局灶性脑缺血周边区立体定位移植 | 第25-26页 |
| 3.4.4 移植术后大鼠行为学评分 | 第26-27页 |
| 3.5 标本的制作和免疫组织化学染色方法 | 第27-28页 |
| 3.5.1 大鼠的心脏灌流 | 第27-28页 |
| 3.5.2 脑组织切片 HE 染色 | 第28页 |
| 3.5.3 脑组织切片免疫组织化学染色（S-P 法） | 第28页 |
| 3.6 数据采集 | 第28-29页 |
| 3.7 统计学分析 | 第29-30页 |
| 第4章 结果 | 第30-41页 |
| 4.1 骨髓 EPCS 的生长特性 | 第30-31页 |
| 4.2 免疫荧光细胞化学 | 第31页 |
| 4.3 各组大鼠神经行为学评分 | 第31-32页 |
| 4.4 TTC 染色比较脑梗死体积 | 第32-33页 |
| 4.5 病理学实验结果 | 第33-41页 |
| 4.5.1 HE 染色 | 第33-35页 |
| 4.5.2 脑组织 VEGF 免疫组织化学染色 | 第35-38页 |
| 4.5.3 脑组织 FGF-2 免疫组织化学染色 | 第38-41页 |
| 第5章 讨论 | 第41-45页 |
| 5.1 EPCS 的生物学特性及其应用 | 第41-42页 |
| 5.2 不同来源的 EPCS | 第42页 |
| 5.3 移植时间窗和剂量的选择 | 第42-43页 |
| 5.4 脑缺血后 VEGF 和 FGF-2 的表达 | 第43-45页 |
| 第6章 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-50页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51页 |