| 摘要 | 第3-7页 |
| Abstract | 第7-11页 |
| 缩写词 | 第12-16页 |
| 前言 | 第16-37页 |
| 1 外泌体的形成、成分、分离和鉴定 | 第17-20页 |
| 1.1 外泌体的形成 | 第17-18页 |
| 1.2 外泌体的分子组成 | 第18-20页 |
| 1.3 外泌体的分离和鉴定. | 第20页 |
| 2 外泌体的生物学功能 | 第20-26页 |
| 2.1 介导细胞间信息传递 | 第21-22页 |
| 2.2 作为诊断标志物 | 第22-25页 |
| 2.3 药物载体 | 第25-26页 |
| 3 循环miRNAs在脑卒中诊断生物标志物的研究 | 第26-32页 |
| 3.1 循环miRNAs作为标志物的优点与缺点 | 第26-27页 |
| 3.2 脑缺血损伤动物模型循环miRNAs的研究 | 第27-28页 |
| 3.3 缺血性脑卒中患者血液miRNAs的研究 | 第28-32页 |
| 4 脑缺血损伤与炎症 | 第32-33页 |
| 5.外泌体在脑卒中的应用 | 第33-37页 |
| 5.1 外泌体在缺血性脑卒中治疗中的应用 | 第33-35页 |
| 5.2 作为诊断标志物 | 第35-37页 |
| 第一部分 小鼠血清外泌体小RNAs的组成、来源及其生物学意义 | 第37-64页 |
| 引言 | 第37页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第37-40页 |
| 1.1 实验动物 | 第37-38页 |
| 1.2 实验细胞 | 第38页 |
| 1.3 主要试剂 | 第38页 |
| 1.4 主要试剂的配制 | 第38-40页 |
| 1.5 主要仪器 | 第40页 |
| 2.实验方法 | 第40-48页 |
| 3.实验结果 | 第48-59页 |
| 4.讨论 | 第59-63页 |
| 5 小结 | 第63-64页 |
| 第二部分 脑缺血损伤增加血清外泌体中一组脑特异性或脑高表达miRNAs的表达水平：基于小RNA测序的综合研究 | 第64-89页 |
| 引言 | 第64-65页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第65-66页 |
| 2 实验方法 | 第66-71页 |
| 3 实验结果 | 第71-86页 |
| 3.1 小鼠血清外泌体的分离与鉴定.... | 第71-73页 |
| 3.2 脑缺血损伤增加小鼠血清外泌体的浓度.. | 第73-74页 |
| 3.3 sham组和MCAO组小鼠血清外泌体的小RNAs测序分析 | 第74-76页 |
| 3.4 MCAO小鼠血清外泌体鉴定到更多已知和新预测的miRNAs | 第76-77页 |
| 3.5 急性脑缺血损伤显著改变小鼠血清外泌体的miRNAs表达谱 | 第77-80页 |
| 3.6 MCAO小鼠的血清外泌体上调一组脑特异性或脑高表达的miRNAs | 第80-81页 |
| 3.7 脑缺血再灌注损伤后血清外泌体中脑特异性或脑高表达miRNAs在不同时间的表达变化 | 第81-83页 |
| 3.8 缺血损伤脑半球中脑特异性miRNAs的动态变化 | 第83-84页 |
| 3.9 脑特异性miRNAs在血清外泌体和去除外泌体的血清之间的分布差异 | 第84-86页 |
| 4 讨论 | 第86-88页 |
| 5 小结 | 第88-89页 |
| 第三部分 血清外泌体传递炎症信号 | 第89-119页 |
| 引言 | 第89页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第89-92页 |
| 2 实验方法 | 第92-99页 |
| 3 实验结果 | 第99-115页 |
| 3.1 小鼠血清外泌体的分离和鉴定 | 第99-100页 |
| 3.2 LPS处理增加了小鼠血清外泌体的浓度和RNAs含量 | 第100-102页 |
| 3.3 PBS和LPS外泌体的小RNAs测序分析 | 第102页 |
| 3.4 LPS外泌体鉴定到更多的miRNAs | 第102-103页 |
| 3.5 LPS处理显著改变了小鼠血清外泌体的miRNAs表达谱 | 第103-105页 |
| 3.6 LPS外泌体差异表达miRNAs的生物信息学分析 | 第105-107页 |
| 3.7 LPS处理小鼠后提取的血浆外泌体和淋巴细胞具有相似的炎症细胞因子表达谱 | 第107-108页 |
| 3.8 LPS处理增加小鼠血清外泌体中促炎细胞因子IL-1β和IL6的蛋白表达水平 | 第108-109页 |
| 3.9 LPS和LPS血清诱导RAW264.7和BV2细胞炎症因子的表达 | 第109-110页 |
| 3.10 LPS外泌体传递生物活性信号至RAW264.7和BV2细胞 | 第110-113页 |
| 3.11 LPS外泌体传递炎症信号至正常小鼠 | 第113-115页 |
| 4 讨论 | 第115-118页 |
| 5 小结 | 第118-119页 |
| 第四部分 脑缺血损伤小鼠的血清外泌体促进小胶质细胞活化 | 第119-132页 |
| 引言 | 第119页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第119-121页 |
| 2 实验方法 | 第121-123页 |
| 3 实验结果 | 第123-130页 |
| 3.1 Sham组与MCAO组小鼠血清外泌体之间差异表达miRNAs的生物信息学分析.. | 第123-127页 |
| 3.2 MCAO小鼠血清外泌体促进小胶质细胞活化 | 第127-130页 |
| 4 讨论 | 第130-131页 |
| 5 小结 | 第131-132页 |
| 全文总结 | 第132-133页 |
| 论文创新点及进一步研究方向 | 第133-134页 |
| 参考文献 | 第134-150页 |
| 在校期间发表的论文 | 第150-151页 |
| 致谢 | 第151页 |
