| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 1 绪论 | 第11-24页 |
| 1.1 本论文的研究背景 | 第11-12页 |
| 1.2 国内研究现状和发展趋势 | 第12-15页 |
| 1.2.1 植物修复技术简介 | 第12页 |
| 1.2.2 现有超富集植物处置方法 | 第12-15页 |
| 1.3 木质纤维素的生物降解 | 第15-20页 |
| 1.3.1 纤维素的降解 | 第17-18页 |
| 1.3.2 半纤维素的降解 | 第18-19页 |
| 1.3.3 木质素的降解 | 第19-20页 |
| 1.4 本论文主要来源、主要研究内容及技术路线 | 第20-22页 |
| 1.4.1 本论文来源 | 第20页 |
| 1.4.2 本论文主要研究内容及技术路线 | 第20-22页 |
| 1.5 本论文的创新点 | 第22页 |
| 1.6 本论文研究意义 | 第22-24页 |
| 2 复合菌对铀超富集植物体减容过程中的产酶条件优化 | 第24-52页 |
| 2.1 引言 | 第24-25页 |
| 2.2 实验材料和方法 | 第25-32页 |
| 2.2.1 实验材料和试剂 | 第25-26页 |
| 2.2.2 主要仪器设备 | 第26-27页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第27-32页 |
| 2.3 结果与分析 | 第32-49页 |
| 2.3.1 氮源对产纤维素酶的影响 | 第32-35页 |
| 2.3.2 接种量对产纤维素酶的影响 | 第35-37页 |
| 2.3.3 培养温度对产纤维素酶的影响 | 第37-39页 |
| 2.3.4 初始pH对产纤维素酶的影响 | 第39-40页 |
| 2.3.5 初始水分(固液比)对产纤维素酶的影响 | 第40-42页 |
| 2.3.6 初始铀浓度对产纤维素酶的影响 | 第42-44页 |
| 2.3.7 产酶条件的正交优化 | 第44-48页 |
| 2.3.8 最优条件下的酶活 | 第48-49页 |
| 2.4 讨论 | 第49-50页 |
| 2.5 本章小结 | 第50-52页 |
| 3 固态发酵条件下复合菌对铀超富集植物体的减容效果研究 | 第52-83页 |
| 3.1 引言 | 第52-53页 |
| 3.2 实验材料和方法 | 第53-56页 |
| 3.2.1 实验材料和试剂 | 第53页 |
| 3.2.2 主要仪器设备 | 第53-54页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第54-56页 |
| 3.3 结果与分析 | 第56-80页 |
| 3.3.1 不同氮源条件下秸秆失重率及各组分的变化 | 第56-60页 |
| 3.3.2 不同接种量条件下秸秆失重率及各组分的变化 | 第60-62页 |
| 3.3.3 不同温度下秸秆失重率及各组分的变化 | 第62-64页 |
| 3.3.4 不同初始pH条件下秸秆失重率及各组分的变化 | 第64-66页 |
| 3.3.5 不同初始水分条件下秸秆失重率及各组分的变化 | 第66-68页 |
| 3.3.6 不同初始铀浓度下秸秆失重率及各组分的变化 | 第68-70页 |
| 3.3.7 正交优化条件下秸秆失重率及各组分的变化 | 第70-78页 |
| 3.3.8 最优条件下的秸秆降解率 | 第78-79页 |
| 3.3.9 SEM结果与分析 | 第79-80页 |
| 3.4 讨论 | 第80-82页 |
| 3.5 本章小结 | 第82-83页 |
| 4 铀、锰、砷复合污染下复合菌的产酶特性研究 | 第83-97页 |
| 4.1 引言 | 第83-84页 |
| 4.2 材料与方法 | 第84-87页 |
| 4.2.1 材料与方法 | 第84页 |
| 4.2.2 主要仪器设备 | 第84页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第84-87页 |
| 4.3 结果与分析 | 第87-94页 |
| 4.3.1 复合污染对复合菌产羧甲基纤维素酶的影响 | 第87-91页 |
| 4.3.2 复合污染对复合菌产滤纸酶活的影响 | 第91-94页 |
| 4.4 讨论 | 第94-95页 |
| 4.5 本章小结 | 第95-97页 |
| 结论与展望 | 第97-100页 |
| 致谢 | 第100-101页 |
| 参考文献 | 第101-112页 |
| 学位攻读期间发表的论文及科研成果 | 第112页 |
