| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4页 |
| 中英文缩略词表 | 第7-8页 |
| 第1章 前言 | 第8-10页 |
| 第2章 材料与方法 | 第10-15页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第10-11页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第10页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第10-11页 |
| 2.1.3 细胞来源 | 第11页 |
| 2.2 方法 | 第11-15页 |
| 2.2.1 BM-MSCs 的全骨髓培养及鉴定 | 第11-12页 |
| 2.2.2 重组 Bac-rtTA2s-ptight-HGF 的构建 | 第12-13页 |
| 2.2.3 重组杆状病毒 vAc~(rtTA2s-Ptight-HGF)的扩增与纯化及病毒滴度测定 | 第13页 |
| 2.2.4 重组杆状病毒 vAc~(rtTA2s-Ptight-HGF)转染 BM-MSCs 及诱导 | 第13-14页 |
| 2.2.5 MTT 法测定转染后 BM-MSCs 的增殖速率 | 第14页 |
| 2.2.6 统计学分析 | 第14-15页 |
| 第3章 结果 | 第15-20页 |
| 3.1 成功培养 P5 代兔 BM-MSCs (Fig.1) | 第15页 |
| 3.2 成功构建重组杆状病毒 vAcrtTA2s-Ptight-HGF | 第15-16页 |
| 3.3 流式细胞仪测得重组杆状病毒滴度为 9.0×10~7TU/mL | 第16页 |
| 3.4 重组杆状病毒 vAc~(rtTA2s-Ptight-HGF)成功转染 BM-MSCs 并实现列浓度的 DOX的诱导表达 | 第16-18页 |
| 3.5 转染后 BM-MSCs 形态无明显改变 | 第18-19页 |
| 3.6 HGF 促进 BM-MSCs 的增殖 | 第19-20页 |
| 第4章 讨论 | 第20-23页 |
| 第5章 小结 | 第23-24页 |
| 第6章 结论 | 第24-25页 |
| 致谢 | 第25-26页 |
| 参考文献 | 第26-30页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第30-31页 |
| 综述 | 第31-38页 |
| 参考文献 | 第36-38页 |
