缩略语表 | 第6-8页 |
中文摘要 | 第8-11页 |
ABSTRACT | 第11-14页 |
前言 | 第15-16页 |
文献回顾 | 第16-21页 |
第一部分 感觉神经化大鼠大段骨缺损模型的制作与成骨效果观察 | 第21-33页 |
1 材料 | 第22-23页 |
1.1 实验试剂 | 第22页 |
1.2 实验仪器 | 第22-23页 |
1.3 实验动物 | 第23页 |
2 方法 | 第23-26页 |
2.1 内固定钢板和组织工程骨制备 | 第23-24页 |
2.2 骨缺损模型制备 | 第24-25页 |
2.3 放射学观察 | 第25-26页 |
2.4 组织学观察 | 第26页 |
2.5 共聚焦观察 | 第26页 |
2.6 统计学处理 | 第26页 |
3 结果 | 第26-30页 |
3.1 一般情况 | 第26页 |
3.2 标本大体观察 | 第26-27页 |
3.3 放射学观察 | 第27-28页 |
3.4 HE染色观察结果 | 第28-29页 |
3.5 共聚焦染色观察结果 | 第29-30页 |
4 讨论 | 第30-33页 |
第二部分 不同浓度感觉与运动神经匀浆对大鼠骨髓基质干细胞增殖与成骨分化的影响 | 第33-41页 |
1 材料 | 第33-34页 |
1.1 实验试剂 | 第33页 |
1.2 主要仪器 | 第33-34页 |
1.3 实验动物 | 第34页 |
2 方法 | 第34-36页 |
2.1 不同浓度梯度大鼠感觉神经、运动神经经匀浆的制备 | 第34-35页 |
2.2 GFP+大鼠BMSCs的培养 | 第35页 |
2.3 不同浓度梯度感觉神经、运动神经神经匀浆对BMSCs干预体系的建立 | 第35页 |
2.4 细胞生长情况观察 | 第35页 |
2.5 细胞增殖情况检测 | 第35页 |
2.6 细胞成骨方向分化观察 | 第35-36页 |
3 结果 | 第36-39页 |
3.1 大体观察细胞生长情况变化 | 第36-37页 |
3.2 不同浓度感觉神经、运动神经匀浆对BMSCs增殖的影响 | 第37-38页 |
3.3 不同浓度感觉神经、运动神经匀浆对BMSCs成骨方向分化的影响 | 第38-39页 |
4 讨论 | 第39-41页 |
第三部分 共培养状态下感觉神经元对骨髓基质干细胞的影响 | 第41-50页 |
1 材料 | 第42-43页 |
1.1 实验试剂 | 第42页 |
1.2 实验材料 | 第42-43页 |
1.3 实验仪器 | 第43页 |
1.4 实验动物 | 第43页 |
2 方法 | 第43-45页 |
2.1 GFP+大鼠BMSCs的培养 | 第43页 |
2.2 混合共培养体系的建立 | 第43-44页 |
2.3 Transwell小室隔离共培养体系的建立 | 第44-45页 |
2.4 统计学处理 | 第45页 |
3 结果 | 第45-48页 |
3.1 混合共培养细胞生长情况 | 第45-46页 |
3.2 隔离共培养后荧光显微镜观察细胞生长状态 | 第46-47页 |
3.3 Transwell小室共培养组细胞增殖数量检测结果 | 第47页 |
3.4 激光共聚焦显微镜观察BMSCs成骨分化方向分化结果 | 第47页 |
3.5 细胞集落实验结果 | 第47-48页 |
3.6 RT-PCR结果 | 第48页 |
4 讨论 | 第48-50页 |
第四部分ITRAQ定量分析筛选感觉神经与运动神经差异蛋白 | 第50-56页 |
1 材料 | 第50-51页 |
1.1 实验试剂 | 第50-51页 |
1.2 主要仪器 | 第51页 |
1.3 实验动物 | 第51页 |
2 方法 | 第51-53页 |
2.1 感觉神经与运动神经组织的获取 | 第51页 |
2.2 蛋白质提取过程 | 第51-52页 |
2.3 蛋白质浓度测量 | 第52页 |
2.4 SDS电泳 | 第52页 |
2.5 蛋白质酶解 | 第52页 |
2.6 iTRAQ标记 | 第52页 |
2.7 SCX分离 | 第52页 |
2.8 基于Triple TOF 5600 的LC-ESI-MSMS分析 | 第52页 |
2.9 数据采集 | 第52-53页 |
2.10 定量信息统计 | 第53页 |
3 结果 | 第53-54页 |
3.1 鉴定结果统计 | 第53页 |
3.2 差异蛋白统计 | 第53-54页 |
4 讨论 | 第54-56页 |
小结 | 第56-58页 |
参考文献 | 第58-65页 |
个人简历和研究成果 | 第65-67页 |
致谢 | 第67页 |