摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
第一章 绪论 | 第12-26页 |
1 生物柴油概述 | 第12页 |
2 生物柴油研究现状 | 第12-13页 |
3 生物柴油的制备方法 | 第13-15页 |
3.1 碱催化法 | 第13-14页 |
3.2 酸催化法 | 第14页 |
3.3 生物酶催化法 | 第14页 |
3.4 超临界甲醇法 | 第14-15页 |
4 微生物油脂 | 第15页 |
5 产油微生物 | 第15-19页 |
5.1 产油酵母菌 | 第16-17页 |
5.2 产油霉菌 | 第17-18页 |
5.3 产油细菌 | 第18页 |
5.4 产油微藻 | 第18-19页 |
6 微生油脂合成途径及调控 | 第19-21页 |
6.1 微生物油脂合成途径 | 第19-20页 |
6.2 培养基中氮源含量对油脂合成的调控 | 第20-21页 |
7 短梗霉(Aureobasidium spp.)简介 | 第21-22页 |
7.1 短梗霉的形态 | 第21页 |
7.2 短梗霉的分布和分类 | 第21-22页 |
7.3 短梗霉的发酵产物 | 第22页 |
8 菊粉和菊芋 | 第22页 |
9 菊粉酶 | 第22-23页 |
10 本论文研究背景和主要研究内容 | 第23-26页 |
10.1 本论文的研究背景 | 第23-24页 |
10.2 本论文的主要研究内容 | 第24-26页 |
第二章 表达载体pAPX13的构建 | 第26-44页 |
1 前言 | 第26-27页 |
2 实验材料和方法 | 第27-36页 |
2.1 菌株和质粒 | 第27-28页 |
2.2 试剂和培养基 | 第28-29页 |
2.3 方法 | 第29-36页 |
3 结果与讨论 | 第36-43页 |
3.1 潮霉素B敏感性测试结果 | 第36-37页 |
3.2 A.melanogenum HN6.2菌株基因组DNA的提取 | 第37-38页 |
3.3 tef1、18S rDNA、26S rDNA和HPT-Poly(A)的克隆 | 第38-39页 |
3.4 18S-tef1-sp-MCS和tef1-HPT-Poly(A)的克隆 | 第39-41页 |
3.5 表达載体PAPX13的构建 | 第41-43页 |
4 本章小结 | 第43-44页 |
第三章 菊粉酶基因INU1在A.melanogenum P10菌株中的表达 | 第44-68页 |
1 前言 | 第44页 |
2 材料与方法 | 第44-55页 |
2.1 菌株和质粒 | 第44页 |
2.2 主要试剂和培养基 | 第44-46页 |
2.3 实验方法 | 第46-55页 |
3 结果与讨论 | 第55-66页 |
3.1 基因组DNA提取与INU1 PCR扩增结果 | 第55-56页 |
3.2 质粒INU1-Simple和表达载体pAPX13双酶切结果 | 第56页 |
3.3 线性转化片段的扩增及回收 | 第56-57页 |
3.4 P10菌株的转化与转化子的筛选 | 第57-58页 |
3.5 高产菊粉酶转化子的筛选 | 第58-59页 |
3.6 API41菌株菊粉酶基因的PCR验证 | 第59页 |
3.7 生物量与酶活的关系 | 第59-60页 |
3.8 菊粉酶基因相对表达水平 | 第60-61页 |
3.9 菊粉酶的分布 | 第61-63页 |
3.10 重组菊粉酶的最适作用pH和pH稳定性 | 第63-64页 |
3.11 最适反应温度和温度稳定性 | 第64-66页 |
3.12 转化子产菊粉酶稳定性 | 第66页 |
4 本章小结 | 第66-68页 |
第四章 API41菌株产胞内油脂的研究 | 第68-81页 |
1 前言 | 第68页 |
2 材料与方法 | 第68-73页 |
2.1 菌株 | 第68页 |
2.2 主要试剂和培养基 | 第68-69页 |
2.3 实验方法 | 第69-73页 |
3 结果与讨论 | 第73-80页 |
3.1 菊粉浓度对菌体生物量和胞内油脂含量的影响 | 第73-74页 |
3.2 摇瓶水平生产胞内油脂 | 第74-76页 |
3.3 发酵罐水平生产胞内油脂 | 第76-77页 |
3.4 脂肪酸成分及相对含量分析 | 第77-78页 |
3.5 生物柴油的制备及点火实验 | 第78-80页 |
4 本章小结 | 第80-81页 |
全文总结与创新点 | 第81-83页 |
参考文献 | 第83-90页 |
致谢 | 第90-91页 |
个人简历和已发表的学术论文 | 第91页 |