| 英文缩略词表(Abbreviation) | 第7-9页 |
| 摘要 | 第9-13页 |
| Abstract | 第13-17页 |
| 1 前言 | 第18-21页 |
| 2 实验材料 | 第21-23页 |
| 2.1 实验动物 | 第21页 |
| 2.2 药物与试剂 | 第21-22页 |
| 2.3 仪器与设备 | 第22-23页 |
| 3 实验方法 | 第23-29页 |
| 3.1 小鼠骨髓源DCs分离与培养 | 第23-24页 |
| 3.2 小鼠骨髓源DCs的鉴定 | 第24页 |
| 3.2.1 小鼠骨髓源DCs形态变化鉴定 | 第24页 |
| 3.2.2 小鼠骨髓源DCs表型鉴定 | 第24页 |
| 3.3 不同浓度TNF-α对小鼠骨髓源DCs表面分子CD83的影响 | 第24页 |
| 3.4 TNF-α刺激小鼠骨髓源DCs不同时间对表面分子CD83的影响 | 第24-25页 |
| 3.5 CP-25对TNF-α刺激小鼠骨髓源DCs表面分子CD80、CD86、CD40、MHC-Ⅱ和CD83的影响 | 第25页 |
| 3.6 CP-25对TNF-α刺激的小鼠骨髓源DCs抗原摄取功能的影响 | 第25页 |
| 3.7 TNF-α刺激的小鼠骨髓源DCs对同种异体T淋巴细胞增殖反应的影响及CP-25的作用 | 第25-26页 |
| 3.8 流式细胞术测定CP-25对TNF-α刺激的小鼠骨髓源DCs上TNFR1和TNFR2表达的影响 | 第26-27页 |
| 3.9 Western blot法检测CP-25对TNF-α刺激的小鼠骨髓源DCs中TNFR1、TRADD、TRAF2、NF-κB p65的表达 | 第27-29页 |
| 3.9.1 小鼠骨髓源DCs样品的制备及蛋白质的提取 | 第27页 |
| 3.9.2 蛋白质定量(Lowry法) | 第27-28页 |
| 3.9.3 Western blot操作步骤 | 第28-29页 |
| 3.10 统计学处理 | 第29页 |
| 4 结果 | 第29-49页 |
| 4.1 小鼠骨髓源DCs形态及表型鉴定 | 第29-31页 |
| 4.2 不同浓度TNF-α对小鼠骨髓源DCs表面分子CD83表达的影响 | 第31-32页 |
| 4.3 TNF-α刺激小鼠骨髓源DCs不同时间对表面分子CD83表达的影响 | 第32-33页 |
| 4.4 TNF-α上调小鼠骨髓源DCs上CD80表达,CP-25能够下调CD80表达 | 第33-35页 |
| 4.5 TNF-α上调骨髓源DCs表面CD86表达,CP-25抑制CD86表达 | 第35-36页 |
| 4.6 TNF-α上调骨髓源DCs上CD40表达,CP-25下调CD40表达 | 第36-38页 |
| 4.7 TNF-α促进骨髓源DCs表面MHC-Ⅱ的表达,CP-25抑制MHC-Ⅱ的表达 | 第38-39页 |
| 4.8 TNF-α增强骨髓源DCs上CD83的表达,CP-25抑制CD83的表达 | 第39-40页 |
| 4.9 TNF-α抑制骨髓源DCs对抗原的摄取能力,CP-25能够上调DCs对抗原的摄取能力 | 第40-42页 |
| 4.10 TNF-α刺激的骨髓源DCs促进T细胞增殖反应,CP-25能够下调DCs对T细胞增殖反应的影响 | 第42-43页 |
| 4.11 TNF-α上调骨髓源DCs表面TNFR1的表达,CP-25能够抑制TNFR1的表达 | 第43-45页 |
| 4.12 TNF-α对TNFR2的表达无明显影响,CP-25对TNFR2也无明显下调作用 | 第45-46页 |
| 4.13 TNF-α促进小鼠骨髓源DCs对TNFR1,TRADD,TRAF2,NF-κB p65蛋白表达,CP-25可以抑制TNFR1,TRADD,TRAF2,NF-κB p65的表达 | 第46-49页 |
| 5. 讨论 | 第49-53页 |
| 5.1 TNF-α促进小鼠骨髓源DCs成熟,抑制抗原摄取能力,促进T细胞增殖 | 第49-51页 |
| 5.2 TNF-α促进小鼠骨髓源DCs成熟,上调DC功能,可能与其受体TNFR1介导的TRADD-TRAF2-NF-κB信号通路有关 | 第51-52页 |
| 5.3 CP-25抑制TNF-α刺激增高的小鼠骨髓源DCs成熟和功能可能与其调控TNF-α/TNFR1介导TRADD-TRAF2-NF-κB信号通路有关 | 第52-53页 |
| 6 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-62页 |
| 附录 | 第62-64页 |
| 致谢 | 第64-66页 |
| 综述 | 第66-79页 |
| 参考文献 | 第75-79页 |
