| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 引言 | 第12-26页 |
| 1.1 西双版纳黄瓜概述 | 第12页 |
| 1.2 类胡萝卜素 | 第12-20页 |
| 1.2.1 类胡萝卜素的功能与作用 | 第13页 |
| 1.2.2 类胡萝卜素的生物合成途径 | 第13-15页 |
| 1.2.3 影响类胡萝卜素生物合成的因素与调控机制 | 第15-17页 |
| 1.2.4 合成途径中关键酶基因 | 第17-20页 |
| 1.3 果实发育 | 第20-21页 |
| 1.3.1 细胞分裂相关蛋白 | 第20页 |
| 1.3.2 细胞膨大相关蛋白 | 第20-21页 |
| 1.4 实时荧光定量技术 | 第21-22页 |
| 1.4.1 实时荧光定量技术原理 | 第21-22页 |
| 1.4.2 实时荧光定量技术定量方式 | 第22页 |
| 1.5 内参基因研究进展 | 第22-26页 |
| 1.5.1 应用内参基因的必要性 | 第22-23页 |
| 1.5.2 内参基因的必备条件 | 第23页 |
| 1.5.3 传统内参基因 | 第23-24页 |
| 1.5.4 新型内参基因的筛选 | 第24页 |
| 1.5.5 内参基因的稳定性评价方法 | 第24-26页 |
| 第二章 黄瓜果实稳定内参基因的筛选与评价 | 第26-44页 |
| 2.1 材料与方法 | 第26-27页 |
| 2.1.1 转录组测序试验材料 | 第26页 |
| 2.1.2 内参基因筛选试验材料及不同处理组合 | 第26-27页 |
| 2.2 试验方法 | 第27-29页 |
| 2.2.1 总RNA提取方法 | 第27-28页 |
| 2.2.2 cDNA文库构建及测序 | 第28页 |
| 2.2.3 cDNA第1链的合成和gRNA的去除 | 第28页 |
| 2.2.4 候选内参基因的筛选和引物设计 | 第28页 |
| 2.2.5 qRT-PCR | 第28-29页 |
| 2.2.6 数据分析 | 第29页 |
| 2.3 结果与分析 | 第29-41页 |
| 2.3.1 转录组测序基本结果 | 第29-30页 |
| 2.3.2 候选内参基因的筛选 | 第30-32页 |
| 2.3.3 引物设计和特异性检测 | 第32-33页 |
| 2.3.4 荧光定量PCR分析 | 第33-34页 |
| 2.3.5 候选基因的表达稳定性评价 | 第34-41页 |
| 2.4 讨论 | 第41-44页 |
| 第三章 西双版纳黄瓜 β- 胡萝卜素生物合成相关基因的表达分析 | 第44-55页 |
| 3.1 材料与方法 | 第44-45页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第44页 |
| 3.1.2 实时荧光定量PCR | 第44-45页 |
| 3.1.3 qRT-PCR对转录组测序数据的验证 | 第45页 |
| 3.1.4 方差分析 | 第45页 |
| 3.2 结果与分析 | 第45-52页 |
| 3.2.1 影响黄瓜果实 β-胡萝卜素合成的主要基因拷贝 | 第45-47页 |
| 3.2.2 方差分析结果 | 第47页 |
| 3.2.3 CsPsy1基因的表达分析 | 第47-49页 |
| 3.2.4 CsPds、CsZds1、CsLcyb1基因的表达分析 | 第49-51页 |
| 3.2.5 CsChyb1、CsZep基因的表达分析 | 第51-52页 |
| 3.3 讨论 | 第52-55页 |
| 第四章 黄瓜果实发育相关基因表达分析 | 第55-66页 |
| 4.1 材料与方法 | 第55-56页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第55页 |
| 4.1.2 表达差异基因的筛选 | 第55页 |
| 4.1.3 qRT-PCR分析 | 第55-56页 |
| 4.1.4 e-PCR引物特异性检验 | 第56页 |
| 4.2 试验结果 | 第56-63页 |
| 4.2.1 RNA-seq表达分析 | 第56-61页 |
| 4.2.2 e-PCR引物特异性检测结果 | 第61页 |
| 4.2.3 qRT-PCR分析 | 第61-63页 |
| 4.3 讨论 | 第63-66页 |
| 第五章 全文结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-80页 |
| 附录 | 第80-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
| 作者简历 | 第89页 |
