| 摘要 | 第7-12页 |
| ABSTRACT | 第12-15页 |
| 名词缩写 | 第16-19页 |
| 第一章 文献综述 | 第19-41页 |
| 1.1 蛞蝓的研究概况 | 第19-24页 |
| 1.1.1 蛞蝓的生物学特性 | 第19-20页 |
| 1.1.2 蛞蝓化学成分的提取与分析 | 第20-21页 |
| 1.1.3 蛞蝓提取物的药理作用 | 第21-24页 |
| 1.2 动物多糖的研究进展 | 第24-32页 |
| 1.2.1 动物提取、分离纯化及结构分析 | 第24-30页 |
| 1.2.2 动物多糖的药理活性研究 | 第30-32页 |
| 1.3 多糖的结构修饰及波谱学方法鉴定 | 第32-38页 |
| 1.3.1 多糖分子修饰方法 | 第32-35页 |
| 1.3.2 多糖结构修饰的波谱学方法鉴定 | 第35-38页 |
| 1.4 展望 | 第38页 |
| 1.5 本课题研究目的、意义及主要研究内容和预期目标 | 第38-41页 |
| 1.5.1 本课题的研究目的和意义 | 第38-39页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第39页 |
| 1.5.3 预期目标 | 第39-41页 |
| 第二章 双线嗜粘液蛞蝓多糖闪式提取工艺研究 | 第41-67页 |
| 2.1 材料和仪器 | 第42-43页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第42页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第42页 |
| 2.1.3 主要仪器与设备 | 第42-43页 |
| 2.2 实验方法 | 第43-50页 |
| 2.2.1 测定方法 | 第43-47页 |
| 2.2.2 酶解脱蛋白工艺研究 | 第47-48页 |
| 2.2.3 蛞蝓多糖的闪式提取工艺研究 | 第48-50页 |
| 2.3 结果与分析 | 第50-64页 |
| 2.3.1 双线嗜粘液蛞蝓鲜虫体基本组成 | 第50页 |
| 2.3.2 酶解工艺研究结果 | 第50-57页 |
| 2.3.3 蛞蝓多糖闪式提取工艺研究结果 | 第57-64页 |
| 2.4 讨论 | 第64-65页 |
| 2.5 本章小结 | 第65-67页 |
| 第三章 蛞蝓多糖的分离纯化和纯度鉴定 | 第67-89页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第67-68页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第67页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第67-68页 |
| 3.1.3 主要仪器与设备 | 第68页 |
| 3.2 实验方法 | 第68-78页 |
| 3.2.1 蛞蝓粗多糖的提取工艺流程 | 第68-70页 |
| 3.2.2 蛞蝓粗多糖的分离纯化 | 第70-72页 |
| 3.2.3 蛞蝓多糖的HPLC法纯度及分子量测定 | 第72-73页 |
| 3.2.4 多糖含量的测定方法 | 第73页 |
| 3.2.5 蛋白的测定方法 | 第73-74页 |
| 3.2.6 糖醛酸含量的测定方法 | 第74-75页 |
| 3.2.7 氨基己糖的测定方法 | 第75-76页 |
| 3.2.8 样品的氨基酸组成分析 | 第76-78页 |
| 3.3 结果与分析 | 第78-87页 |
| 3.3.1 蛞蝓粗多糖的提取分离结果 | 第78页 |
| 3.3.2 蛞蝓粗多糖PBP的离子柱层析结果 | 第78-80页 |
| 3.3.3 蛞蝓粗多糖PBPn的分级醇沉 | 第80-81页 |
| 3.3.4 蛞蝓多糖的凝胶柱层析结果 | 第81-83页 |
| 3.3.5 蛞蝓多糖的基本组成分析 | 第83-84页 |
| 3.3.6 蛞蝓多糖的氨基酸组成分析结果 | 第84页 |
| 3.3.7 蛞蝓多糖的纯度及分子量测定 | 第84-87页 |
| 3.4 本章小结 | 第87-89页 |
| 第四章 蛞蝓多糖的化学组成和理化性质 | 第89-119页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第89-90页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第89页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第89页 |
| 4.1.3 主要仪器与设备 | 第89-90页 |
| 4.2 实验方法 | 第90-96页 |
| 4.2.1 GC-MS法单糖组成分析 | 第90-91页 |
| 4.2.2 糖残基连接方式分析 | 第91-92页 |
| 4.2.3 PBPn11的PMP衍生化单糖组成分析 | 第92-95页 |
| 4.2.4 核磁共振分析 | 第95页 |
| 4.2.5 氨基酸组成分析 | 第95页 |
| 4.2.6 PBPa11的糖肽连接方式分析 | 第95-96页 |
| 4.2.7 紫外光谱分析 | 第96页 |
| 4.2.8 红外光谱分析 | 第96页 |
| 4.3 结果与分析 | 第96-117页 |
| 4.3.1 乙酰化分析 | 第96-100页 |
| 4.3.2 甲基化分析 | 第100-102页 |
| 4.3.3 T3糖的结构分析 | 第102-109页 |
| 4.3.4 PBPn11的核磁共振分析 | 第109-110页 |
| 4.3.5 PBPa11的糖肽链接方式分析 | 第110-113页 |
| 4.3.6 紫外分析 | 第113-115页 |
| 4.3.7 红外分析 | 第115-117页 |
| 4.4 讨论 | 第117-118页 |
| 4.5 本章小结 | 第118-119页 |
| 第五章 蛞蝓多糖硫酸酯化及硒化分子修饰研究 | 第119-133页 |
| 5.1 材料与仪器 | 第120-121页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第120页 |
| 5.1.2 实验试剂 | 第120页 |
| 5.1.3 主要仪器与设备 | 第120-121页 |
| 5.2 实验方法 | 第121-126页 |
| 5.2.1 硫酸根含量的测定方法 | 第121-122页 |
| 5.2.2 PBPn11的硫酸酯化研究 | 第122-123页 |
| 5.2.3 PBPn11的硒化研究 | 第123-126页 |
| 5.2.4 紫外光谱分析 | 第126页 |
| 5.2.5 红外光谱分析 | 第126页 |
| 5.3 结果与分析 | 第126-130页 |
| 5.3.1 PBPn11硫酸酯化的研究结果 | 第126-128页 |
| 5.3.2 PBPn11硒化的研究结果 | 第128-130页 |
| 5.4 讨论 | 第130-131页 |
| 5.5 本章小结 | 第131-133页 |
| 第六章 蛞蝓多糖的体外活性研究 | 第133-161页 |
| 6.1 材料与仪器 | 第134-135页 |
| 6.1.1 实验材料 | 第134页 |
| 6.1.2 实验试剂 | 第134-135页 |
| 6.1.3 主要仪器与设备 | 第135页 |
| 6.2 实验方法 | 第135-143页 |
| 6.2.1 体外肿瘤细胞抑制作用研究 | 第135-138页 |
| 6.2.2 抗氧化活性研究 | 第138-140页 |
| 6.2.3 蛞蝓多糖的免疫调节活性研究 | 第140-143页 |
| 6.2.4 统计分析 | 第143页 |
| 6.3 结果与分析 | 第143-158页 |
| 6.3.1 蛞蝓多糖及其衍生物的体外抗肿瘤活性研究结果 | 第143-152页 |
| 6.3.2 抗氧化作用研究结果 | 第152-157页 |
| 6.3.3 蛞蝓多糖的免疫调节活性研究结果 | 第157-158页 |
| 6.4 本章小结 | 第158-161页 |
| 全文总结及展望 | 第161-167页 |
| 参考文献 | 第167-176页 |
| 附图 | 第176-184页 |
| 致谢 | 第184-185页 |
| 攻读博士期间论文发表情况 | 第185页 |
