| 符号与缩写 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9-10页 |
| 前言 | 第11-32页 |
| 1 扫描电化学显微镜及其特点 | 第11页 |
| 2 实验装置及SECM探头 | 第11-13页 |
| 3 SECM工作模式 | 第13-14页 |
| 4 SECM在生物方面的应用 | 第14-20页 |
| 4.1 酶的研究 | 第15-18页 |
| 4.2 细胞的研究 | 第18-19页 |
| 4.3 抗原抗体复合物和DNA的检测 | 第19-20页 |
| 5 微反应器与单细胞研究 | 第20-22页 |
| 6 参考文献 | 第22-32页 |
| 第一章 微反应器的构建、表征及结合扫描电化学显微术的应用 | 第32-69页 |
| 1.1 引言 | 第32-36页 |
| 1.2 实验部分 | 第36-47页 |
| 1.2.1 实验仪器 | 第36页 |
| 1.2.2 材料、试剂及溶液 | 第36-37页 |
| 1.2.3 实验方法 | 第37-47页 |
| 1.2.3.1 金电极(探头)的制作 | 第37-39页 |
| 1.2.3.2 微池制作 | 第39-40页 |
| 1.2.3.3 微量加样器制作与应用 | 第40-41页 |
| 1.2.3.4 实验操作 | 第41-44页 |
| 1.2.3.5 电化学检测 | 第44-47页 |
| 1.3 结果与讨论 | 第47-62页 |
| 1.3.1 实验条件 | 第47-59页 |
| 1.3.1.1 金圆盘微电极半径的测定 | 第47页 |
| 1.3.1.2 BQ和H_2Q在金电极上的循环伏安响应 | 第47-48页 |
| 1.3.1.3 电位选择 | 第48-49页 |
| 1.3.1.4 底物浓度影响 | 第49-50页 |
| 1.3.1.5 探头—基底距离对检测电流的影响 | 第50-51页 |
| 1.3.1.6 电化学检测的重现性 | 第51-52页 |
| 1.3.1.7 膜重现性的确定 | 第52-54页 |
| 1.3.1.8 孵育时间的确定 | 第54-55页 |
| 1.3.1.9 低活性的HRP检测电流与时间的关系 | 第55-56页 |
| 1.3.1.10 微池大小的确定 | 第56-58页 |
| 1.3.1.11 SECM检测HRP的最佳实验条件 | 第58-59页 |
| 1.3.2 线性扫描曲线 | 第59页 |
| 1.3.3 HRP检测的线性范围与检测限 | 第59-61页 |
| 1.3.4 SECM图 | 第61-62页 |
| 1.4 结论 | 第62页 |
| 1.5 参考文献 | 第62-69页 |
| 第二章 扫描电化学显微术结合微反应器定量测定人单个中性粒细胞中过氧化物酶 | 第69-85页 |
| 2.1 引言 | 第69-71页 |
| 2.2 实验部分 | 第71-76页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第71页 |
| 2.2.2 材料、试剂及溶液 | 第71-72页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第72-76页 |
| 2.2.3.1 工作电极的制作、微池的制作、电化学检测条件同第一章 | 第72页 |
| 2.2.3.2 中性粒细胞的提取 | 第72页 |
| 2.2.3.3 细胞计数 | 第72-73页 |
| 2.2.3.4 细胞提取液的制备 | 第73页 |
| 2.2.3.5 细胞提取液的加样、测定 | 第73页 |
| 2.2.3.6 单细胞加样 | 第73-75页 |
| 2.2.3.7 单细胞溶膜 | 第75-76页 |
| 2.2.3.8 单细胞内PO的检测 | 第76页 |
| 2.3.结果与讨论 | 第76-81页 |
| 2.3.1 最佳实验条件的确定 | 第76页 |
| 2.3.2 工作电极污染情况的检验 | 第76-77页 |
| 2.3.3 中性粒细胞提取液中PO的测定 | 第77-80页 |
| 2.3.4 人单个中性粒细胞中PO的测定 | 第80-81页 |
| 2.4 结论 | 第81页 |
| 2.5 参考文献 | 第81-85页 |
| 致谢 | 第85页 |
