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天蓝色链霉菌双组分信号转导系统SCO2120/SCO2121的功能研究

摘要第7-9页
Abstract第9-10页
缩略词表第11-13页
第一章 研究背景第13-25页
    1.1 链霉菌第13-16页
        1.1.1 链霉菌简介第13页
        1.1.2 链霉菌的生长发育第13-14页
        1.1.3 链霉菌的基因组和次级代谢产物第14-15页
        1.1.4 链霉菌生物合成的调控机制第15-16页
    1.2 双组份信号转导系统第16-23页
        1.2.1 双组份信号转导系统的分类第17-18页
        1.2.2 双组份信号转导系统的作用机制第18-19页
        1.2.3 双组份信号转导系统的特点第19-21页
        1.2.4 双组份信号转导系统对生命活动的调控第21页
        1.2.5 天蓝色链霉菌中双组份信号转导系统的研究进展第21-23页
    1.3 立题依据与研究内容第23-25页
第二章 实验材料和方法第25-55页
    2.1 实验材料第25-34页
        2.1.1 菌株第25-26页
        2.1.2 质粒第26-27页
        2.1.3 引物第27-29页
        2.1.4 培养基与试剂第29-34页
    2.2 实验方法第34-55页
        2.2.1 天蓝色链霉菌的培养及菌种的保藏第34页
        2.2.2 天蓝色链霉菌总基因组的提取第34-35页
        2.2.3 天蓝色链霉菌基因缺失突变株△2120的构建第35-38页
            2.2.3.1 双交换缺失突变重组质粒的构建第35页
            2.2.3.2 大肠杆菌与链霉菌属间接合转移第35-37页
            2.2.3.3 双交换基因缺失突变株的筛选和鉴定第37-38页
        2.2.4 △2120回补菌株的构建第38-40页
            2.2.4.1 以pSET152为载体回补△2120第38-39页
                (1) 回补菌株△2120/pSET2120的构建第38页
                (2) 回补菌株△2120/pSET2120-2121的构建第38-39页
            2.2.4.2 以pHLY12为载体回补△2120第39-40页
        2.2.5 天蓝色链霉菌的表型分析第40-42页
            2.2.5.1 天蓝色链霉菌的固体培养第40页
            2.2.5.2 天蓝色链霉菌中钙依赖性抗生素(CDA)的检测第40-41页
            2.2.5.3 放线紫红素和十一烷基灵菌红素的含量测定第41页
            2.2.5.4 天蓝色链霉菌孢子表面形态观察第41-42页
        2.2.6 天蓝色链霉菌RNA的提取第42-43页
        2.2.7 天蓝色链霉菌野生型M145与突变株△2120的转录组分析第43-44页
        2.2.8 His-2120融合蛋白的表达与纯化第44-45页
        2.2.9 GST-2120融合蛋白的表达与纯化第45-47页
        2.2.10 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳第47-48页
        2.2.11 SCO2120的体外结合试验第48-50页
        2.2.12 带His-tag基因工程菌株的构建第50-52页
            (1) △2120/pMS2120-1的构建第51-52页
            (2) △2120/pMS2120-2的构建第52页
        2.2.13 天蓝色链霉菌总蛋白的提取第52-53页
        2.2.14 蛋白杂交分析(Western Blot)第53-55页
第三章 实验结果与分析第55-87页
    3.1 sco2120突变菌株的构建第55-59页
        3.1.1 敲除质粒的构建第55-58页
        3.1.2 △2120的验证第58-59页
    3.2 △2120的表型分析第59-63页
        3.2.1 △2120在不同培养基中的生长情况第59-61页
        3.2.2 △2120的产素分析第61-63页
        3.2.3 △2120的孢子发育第63页
    3.3 △2120的基因互补第63-68页
        3.3.1 回补质粒的构建第63-66页
            3.3.1.1 以pSET152为载体构建回补质粒第63-65页
            3.3.1.2 以pHLY12为载体构建回补质粒第65-66页
        3.3.2 回补菌株的构建第66-68页
            3.3.2.1 以pSET152为载体的回补菌株的构建第66-68页
            3.3.2.2 △2120/pHLY2120的构建第68页
    3.4 回补菌株的表型分析第68-72页
        3.4.1 以pSET 152为载体的回补菌株的表型分析第68-72页
            3.4.1.1 △2120/pSET 2120的表型分析第68-69页
            3.4.1.2 △2120/pSET 2120-2121的表型分析第69-72页
    3.5 M145与A2120的转录组分析第72-74页
    3.6 SCO2120融合蛋白的表达第74-77页
        3.6.1 His-2120融合蛋白的表达和纯化第75-76页
        3.6.2 GST-2120融合蛋白的表达和纯化第76-77页
    3.7 SCO2120的体外结合试验第77-81页
        3.7.1 SCO2120结合actⅡ- ORF4的启动子第77-78页
        3.7.2 SCO2120结合redZ启动子第78-79页
        3.7.3 SCO2120结合cdaR启动子第79-80页
        3.7.4 SCO2120与其它基因启动子的结合情况第80-81页
    3.8 SCO2120结合位点的分析第81-82页
    3.9 带His-tag基因工程菌株的构建第82-85页
        3.9.1 构建重组质粒第82-84页
            3.9.1.1 pMS2120-1的构建第82-83页
            3.9.1.2 pMS2120-2的构建第83-84页
        3.9.2 构建基因工程菌株第84-85页
            3.9.2.1 △2120/pMS2120-1的构建第84-85页
            3.9.2.2 △2120/pMS2120-2的构建第85页
    3.10 △2120/pMS2120-2总蛋白的提取和蛋白杂交分析(Western Blot)第85-87页
第四章 总结与展望第87-89页
    4.1 全文总结第87-88页
    4.2 研究展望第88-89页
参考文献第89-94页
致谢第94-95页
附件第95页

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