| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-21页 |
| 1.1 前言 | 第11页 |
| 1.2 植物激素诱导单性结实的生理机制 | 第11-12页 |
| 1.2.1 生长素诱导单性结实的生理机制 | 第11-12页 |
| 1.2.2 细胞分裂素诱导单性结实的生理机制 | 第12页 |
| 1.2.3 赤霉素诱导单性结实的生理机制 | 第12页 |
| 1.2.4 其它激素对单性结实的影响 | 第12页 |
| 1.3 植物激素诱导单性结实的分子机制 | 第12-18页 |
| 1.3.1 生长素合成、运输及信号转导相关的基因 | 第12-15页 |
| 1.3.2 细胞分裂素合成、运输及信号转导相关的基因 | 第15-16页 |
| 1.3.3 赤霉素合成、运输及信号转导相关的基因 | 第16-17页 |
| 1.3.4 脱落酸合成、运输及信号转导相关的基因 | 第17-18页 |
| 1.4 细胞分裂和膨大相关基因 | 第18-19页 |
| 1.5 MADS-box基因家族 | 第19-20页 |
| 1.6 本研究的目的与意义 | 第20-21页 |
| 第二章 材料和方法 | 第21-28页 |
| 2.1 植物材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 试验材料处理 | 第21页 |
| 2.1.2 取样 | 第21-22页 |
| 2.2 坐果率调查 | 第22页 |
| 2.3 植物激素测定 | 第22页 |
| 2.4 幼果细胞学观察 | 第22-23页 |
| 2.5 转录组测序 | 第23-26页 |
| 2.5.1 梨幼果RNA提取 | 第23页 |
| 2.5.2 梨幼果转录组测序 | 第23-26页 |
| 2.6 果实品质测定 | 第26-27页 |
| 2.6.1 单果重测定 | 第26页 |
| 2.6.2 果实硬度测定 | 第26-27页 |
| 2.6.3 果实纵横径测定 | 第27页 |
| 2.6.4 果实可溶性固形物含量测定 | 第27页 |
| 2.6.5 果核直径测定 | 第27页 |
| 2.7 数据处理 | 第27-28页 |
| 第三章 结果和分析 | 第28-43页 |
| 3.1 不同处理对砀山酥梨坐果率影响 | 第28页 |
| 3.2 不同处理对砀山酥梨果实品质的影响 | 第28-29页 |
| 3.3 砀山酥梨幼果形态学和组织学观察 | 第29-31页 |
| 3.4 坐果过程中相关激素变化情况 | 第31-32页 |
| 3.5 转录组数据分析坐果过程中基因变化情况 | 第32-35页 |
| 3.6 差异基因在人工授粉和GA_(4+7) 处理中的分布情况 | 第35-36页 |
| 3.7 坐果过程中赤霉素代谢和信号转导相关基因表达情况 | 第36-37页 |
| 3.8 坐果过程中生长素和脱落酸代谢与信号转导相关基因表达情况 | 第37-38页 |
| 3.9 坐果过程中细胞周期和细胞膨大相关基因表达情况 | 第38-41页 |
| 3.10 坐果过程中糖代谢相关基因表达情况 | 第41-42页 |
| 3.11 坐果过程中转录因子表达情况 | 第42-43页 |
| 第四章 讨论 | 第43-46页 |
| 4.1 GA_(4+7) 诱导砀山酥梨单性结实 | 第43页 |
| 4.2 GA_(4+7) 诱导砀山酥梨单性结实过程中引起的激素变化 | 第43-44页 |
| 4.3 GA_(4+7) 促进幼果细胞分裂与膨大 | 第44-45页 |
| 4.4 GA_(4+7) 诱导砀山酥梨单性结实过程中引起光合作用和碳水化合物代谢变化 | 第45页 |
| 4.5 GA_(4+7) 诱导梨单性结实过程中引起MADS-box家族基因的变化 | 第45-46页 |
| 第五章 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-54页 |
| 附录 | 第54-57页 |
| 缩略词 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 作者简介 | 第59页 |
