胡萝卜多糖提取工艺优化及其超声改性研究
摘要 | 第3-5页 |
ABSTRACT | 第5-6页 |
第1章 绪论 | 第12-22页 |
1.1 胡萝卜研究进展 | 第12-13页 |
1.1.1 胡萝卜生物学特性 | 第12-13页 |
1.1.2 胡萝卜资源分布 | 第13页 |
1.2 多糖研究进展 | 第13-14页 |
1.3 多糖的提取技术研究进展 | 第14-16页 |
1.3.1 浸提法 | 第15页 |
1.3.2 酶提法 | 第15-16页 |
1.3.3 微波提取法 | 第16页 |
1.3.4 超声提取法 | 第16页 |
1.4 多糖改性研究进展 | 第16-20页 |
1.4.1 物理降解 | 第17-19页 |
1.4.1.1 超声法 | 第17-18页 |
1.4.1.2 辐射法 | 第18-19页 |
1.4.2 生物降解 | 第19页 |
1.4.2.1 酶降解 | 第19页 |
1.4.2.2 发酵法 | 第19页 |
1.4.3 化学降解 | 第19-20页 |
1.4.3.1 酸降解 | 第19-20页 |
1.4.3.2 NaNO_2降解 | 第20页 |
1.4.3.3 氧化法 | 第20页 |
1.5 本文研究的主要内容及意义 | 第20-22页 |
1.5.1 研究的主要内容 | 第20-21页 |
1.5.2 研究的意义 | 第21-22页 |
第2章 胡萝卜多糖的提取工艺优化 | 第22-29页 |
2.1 引言 | 第22页 |
2.2 实验材料与仪器 | 第22-23页 |
2.2.1 材料与试剂 | 第22-23页 |
2.2.2 仪器与设备 | 第23页 |
2.3 实验方法 | 第23-24页 |
2.3.1 微波辅助提取法 | 第23-24页 |
2.3.1.1 提取工艺流程 | 第23页 |
2.3.1.2 微波辅助提取单因素实验 | 第23-24页 |
2.3.1.3 正交试验 | 第24页 |
2.4 结果与讨论 | 第24-27页 |
2.4.1 微波辅助提取法实验结果 | 第24-26页 |
2.4.1.1 提取时间对胡萝卜多糖的得率影响 | 第24-25页 |
2.4.1.2 料液比对胡萝卜多糖的得率影响 | 第25-26页 |
2.4.2 正交试验结果 | 第26-27页 |
2.4.3 验证试验 | 第27页 |
2.5 本章小结 | 第27-29页 |
第3章 胡萝卜多糖的分子量测定及其理化性质分析 | 第29-38页 |
3.1 引言 | 第29页 |
3.2 实验材料与仪器 | 第29-30页 |
3.2.1 材料与试剂 | 第29-30页 |
3.2.2 仪器与设备 | 第30页 |
3.3 实验方法 | 第30-31页 |
3.3.1 胡萝卜多糖MCP相对分子质量测定 | 第30页 |
3.3.1.1 色谱条件的选择 | 第30页 |
3.3.1.2 实验方法 | 第30页 |
3.3.2 MCP的基本理化性质 | 第30-31页 |
3.3.2.1 总糖含量测定 | 第30-31页 |
3.3.2.2 糖醛酸的测定 | 第31页 |
3.3.3 碘-碘化钾反应 | 第31页 |
3.3.4 扫描电子显微镜观察 | 第31页 |
3.4 实验结果 | 第31-37页 |
3.4.1 胡萝卜多糖MCP相对分子质量测定 | 第31-35页 |
3.4.2 理化性质的测定 | 第35-37页 |
3.4.2.1 总糖含量 | 第35-36页 |
3.4.3.2 糖醛酸含量 | 第36-37页 |
3.4.3 碘-碘化钾反应 | 第37页 |
3.4.4 扫描电子显微镜观察 | 第37页 |
3.5 本章小结 | 第37-38页 |
第4章 胡萝卜多糖MCP体外抗氧化性研究 | 第38-44页 |
4.1 引言 | 第38页 |
4.2 实验材料及设备 | 第38-39页 |
4.2.1 材料与试剂 | 第38页 |
4.2.2 仪器与设备 | 第38-39页 |
4.3 实验方法 | 第39-40页 |
4.3.1 DPPH自由基清除能力 | 第39页 |
4.3.2 ABTS快速法检测自由基清除能力 | 第39页 |
4.3.3 铁离子还原能力 | 第39-40页 |
4.4 实验结果 | 第40-43页 |
4.4.1 DPPH自由基清除能力 | 第40-41页 |
4.4.2 ABTS快速法检测自由基清除能力 | 第41页 |
4.4.3 铁离子还原能力 | 第41-43页 |
4.5 本章小结 | 第43-44页 |
第5章 胡萝卜多糖MCP的超声改性及简单结构表征 | 第44-65页 |
5.1 引言 | 第44页 |
5.2 实验材料与仪器 | 第44-45页 |
5.2.1 材料与试剂 | 第44-45页 |
5.2.2 仪器与设备 | 第45页 |
5.3 实验方法 | 第45-47页 |
5.3.1 胡萝卜多糖MCP超声降解 | 第45-46页 |
5.3.2 胡萝卜多糖UMCP的相对分子质量测定 | 第46页 |
5.3.3 单糖组成测定 | 第46页 |
5.3.4 总糖含量测定 | 第46-47页 |
5.3.5 糖醛酸含量测定 | 第47页 |
5.3.6 红外光谱分析 | 第47页 |
5.3.7 SEM表观分析 | 第47页 |
5.4 实验结果 | 第47-64页 |
5.4.1 胡萝卜多糖UMCP相对分子质量 | 第47-48页 |
5.4.1.1 绘制标准曲线 | 第47页 |
5.4.1.2 胡萝卜多糖UMCP相对分子质量 | 第47-48页 |
5.4.2 胡萝卜多糖UMCP的单糖组成 | 第48-49页 |
5.4.3 总糖含量测定 | 第49-52页 |
5.4.3.1 绘制标准曲线 | 第49页 |
5.4.3.2 超声浓度和时间对糖含量的影响 | 第49-51页 |
5.4.3.3 超声功率对总糖含量的影响 | 第51-52页 |
5.4.4 MCP糖醛酸含量 | 第52-55页 |
5.4.4.1 绘制标准曲线 | 第52-53页 |
5.4.4.2 超声浓度和时间对糖醛酸含量的影响 | 第53-54页 |
5.4.4.3 超声功率对糖醛酸含量的影响 | 第54-55页 |
5.4.5 红外光谱分析 | 第55-58页 |
5.4.6 SEM扫描电镜分析 | 第58-64页 |
5.5 本章小结 | 第64-65页 |
第6章 结论与展望 | 第65-67页 |
6.1 结论 | 第65-66页 |
6.2 进一步研究方向 | 第66-67页 |
致谢 | 第67-69页 |
参考文献 | 第69-73页 |