| 个人简历 | 第3-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第一章 麦冬皂苷D抗心肌肥大表征作用研究 | 第11-33页 |
| 1.前言 | 第11-12页 |
| 2.材料与方法 | 第12-24页 |
| 2.1 药品与试剂 | 第12-13页 |
| 2.2 设备与仪器 | 第13页 |
| 2.3 药品配制 | 第13-14页 |
| 2.4 细胞培养 | 第14-15页 |
| 2.5 MTS检测H9c2细胞活性 | 第15-16页 |
| 2.6 BCA法检测细胞总蛋白表达 | 第16页 |
| 2.7 qRT-PCR检测目的基因mRNA的表达 | 第16-18页 |
| 2.8 Western-blot检测自噬蛋白的表达 | 第18-22页 |
| 2.9 高内涵技术检测自噬体，线粒体膜电位和F-actin表达 | 第22-24页 |
| 2.10 统计分析 | 第24页 |
| 3 结果 | 第24-31页 |
| 3.1 麦冬皂苷D的细胞毒性检测 | 第24-25页 |
| 3.2 麦冬皂苷D对AngII诱导的总蛋白表达的影响 | 第25-26页 |
| 3.3 麦冬皂苷D对肥大基因表达的影响 | 第26-27页 |
| 3.4 麦冬皂苷D对心肌肥大细胞内自噬变化的影响 | 第27-29页 |
| 3.5 麦冬皂苷D对线粒体膜电位影响 | 第29-30页 |
| 3.6 麦冬皂苷D对F-actin肌动蛋白表达的影响 | 第30-31页 |
| 4.讨论 | 第31-33页 |
| 第二章 麦冬皂苷D通过抑制NF-κB减缓心肌肥大机制 | 第33-48页 |
| 1.前言 | 第33-34页 |
| 2.材料与方法 | 第34-41页 |
| 2.1 药品与试剂 | 第34-35页 |
| 2.2 设备与仪器 | 第35页 |
| 2.3 细胞培养 | 第35页 |
| 2.4 母液配制 | 第35-36页 |
| 2.5 qRT-PCR检测目的基因mRNA的表达 | 第36页 |
| 2.6 Western-blot检测目的蛋白的表达 | 第36页 |
| 2.7 siRNA敲低REL-A表达 | 第36-38页 |
| 2.8 CYP2J3过表达慢病毒载体构建，包装及细胞系稳定表达 | 第38-40页 |
| 2.9 siRNA敲低CYP2J3表达 | 第40页 |
| 2.10 统计分析 | 第40-41页 |
| 3.结果 | 第41-47页 |
| 3.1 AngII对心肌细胞中NF-κB表达的影响 | 第41-42页 |
| 3.2 抑制NF-κB对于抗心肌肥大的作用 | 第42页 |
| 3.3 麦冬皂苷D对NF-κB相关基因和蛋白表达的影响 | 第42-44页 |
| 3.4 CYP2J3过表达对肥大细胞核转录因子表达的影响 | 第44-45页 |
| 3.5 CYP2J3敲低前后麦冬皂苷D对抑制NF-κB作用的影响 | 第45-47页 |
| 4.讨论 | 第47-48页 |
| 第三章 麦冬皂苷D抗心肌肥大作用的动物水平药效学研究 | 第48-61页 |
| 1.前言 | 第48页 |
| 2.材料与方法 | 第48-54页 |
| 2.1 动物与试剂 | 第48-49页 |
| 2.2 仪器与设备 | 第49-50页 |
| 2.3 动物模型的建立 | 第50页 |
| 2.4 药物的配制方法 | 第50-51页 |
| 2.5 超声心动图检测心功能 | 第51页 |
| 2.6 病理切片分析 | 第51-53页 |
| 2.7 qRT-PCR检测目的基因mRNA的表达 | 第53页 |
| 2.8 Western-blot检测目的蛋白的表达 | 第53页 |
| 2.9 ELISA分析血清中ET-1 含量 | 第53-54页 |
| 2.10 统计分析 | 第54页 |
| 3.结果 | 第54-60页 |
| 3.1 麦冬皂苷D对AngII和RAS所引起大鼠的心肌肥大的影响 | 第54-57页 |
| 3.2 麦冬皂苷D对大鼠心肌肥大激活的炎症分子表达的影响 | 第57-59页 |
| 3.3 麦冬皂苷D对血清中ET-1 表达的影响 | 第59-60页 |
| 4.讨论 | 第60-61页 |
| 全文总结 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-69页 |
| 综述 | 第69-82页 |
| 参考文献 | 第77-82页 |
| 主要英文缩略词 | 第82-83页 |
| 攻读学位期间发表的论文目录 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84页 |
