个人简历 | 第3-7页 |
摘要 | 第7-10页 |
ABSTRACT | 第10-13页 |
前言 | 第14-16页 |
第一部分 W1对血小板ADP受体信号通路的影响 | 第16-33页 |
1 实验材料 | 第16-21页 |
1.1 受试药物 | 第16页 |
1.2 实验动物 | 第16页 |
1.3 主要仪器 | 第16-17页 |
1.4 主要试剂 | 第17-18页 |
1.5 常用缓冲液及其他溶液 | 第18-21页 |
2 实验方法 | 第21-27页 |
2.1 动物分组及药物处理 | 第21页 |
2.2 大鼠洗涤血小板的制备 | 第21-22页 |
2.3 Western Blot检测磷酸化Akt、Erk,Rap1的表达 | 第22-26页 |
2.4 血小板铺展 | 第26-27页 |
2.5 统计学分析 | 第27页 |
3 实验结果 | 第27-31页 |
3.1 Ca Cl2和纤维蛋白原对ADP诱导血小板激活的影响 | 第27-28页 |
3.2 W1对大鼠血小板ADP受体信号通路上Akt和Erk的磷酸化表达的影响 | 第28-30页 |
3.3 W1对大鼠血小板ADP受体信号通路上Rap1的影响 | 第30页 |
3.4 W1对大鼠血小板铺展的影响 | 第30-31页 |
4 讨论 | 第31-33页 |
第二部分 辛伐他汀对氯吡格雷的影响及对HepG2细胞中CYP3A4酶表达、活性的影响 | 第33-54页 |
1 实验材料 | 第34-40页 |
1.1 实验动物 | 第34页 |
1.2 Hep G2细胞 | 第34页 |
1.3 主要仪器 | 第34-35页 |
1.4 主要试剂 | 第35-37页 |
1.5 常用缓冲液及其他溶液 | 第37-40页 |
2 实验方法 | 第40-46页 |
2.1 动物分组及药物处理 | 第40页 |
2.2 大鼠洗涤血小板的制备 | 第40页 |
2.3 血小板铺展 | 第40页 |
2.4 Western blot检测Akt磷酸化表达 | 第40页 |
2.5 MTT法检测HepG2的增殖特性 | 第40-41页 |
2.6 Q-PCR检测CYP3A4 mRNA的表达 | 第41-44页 |
2.7 Western-blot检测CYP3A4蛋白水平的表达 | 第44页 |
2.8 CYP3A4酶活性检测 | 第44-46页 |
2.9 统计学分析 | 第46页 |
3 实验结果 | 第46-52页 |
3.1 辛伐他汀,氯吡格雷联合用药对血小板铺展的影响 | 第46-47页 |
3.2 辛伐他汀,氯吡格雷联合用药对Akt磷酸化的影响 | 第47-49页 |
3.3 辛伐他汀对HepG2细胞增殖的影响 | 第49页 |
3.4 辛伐他汀对CYP3A4 mRNA表达的影响 | 第49-50页 |
3.5 辛伐他汀对CYP3A4蛋白表达的影响 | 第50-51页 |
3.6 辛伐他汀对CYP3A4酶活性的影响 | 第51-52页 |
4 讨论 | 第52-54页 |
第三部分 奥美拉唑对HepG2细胞中CYP2C19酶表达及活性的影响 | 第54-64页 |
1 实验材料 | 第54-57页 |
1.1 Hep G2细胞 | 第54页 |
1.2 主要仪器 | 第54-55页 |
1.3 主要试剂 | 第55-56页 |
1.4 常用缓冲液及其他溶液 | 第56-57页 |
2 实验方法 | 第57-59页 |
2.1 MTT法检测Hep G2细胞的生长情况 | 第57页 |
2.2 Q-PCR检测CYP2C19 mRNA的表达 | 第57-58页 |
2.3 Western-blot检测蛋白水平的表达 | 第58页 |
2.4 酶活性检测 | 第58-59页 |
2.5 统计学分析 | 第59页 |
3 实验结果 | 第59-62页 |
3.1 奥美拉唑对培养Hep G2细胞增殖的影响 | 第59页 |
3.2 奥美拉唑下调CYP2C19 mRNA表达水平 | 第59-60页 |
3.3 奥美拉唑下调CYP2C19蛋白水平的表达 | 第60-61页 |
3.4 奥美拉唑对体外肝微粒体CYP2C19酶活性的影响 | 第61-62页 |
4 讨论 | 第62-64页 |
全文总结 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-69页 |
主要英文缩略词表 | 第69-70页 |
综述 | 第70-82页 |
参考文献 | 第76-82页 |
致谢 | 第82-83页 |
攻读学位期间发表的论文目录 | 第83页 |