摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5页 |
第一章 文献综述 | 第9-36页 |
1 芋螺及芋螺毒素研究进展 | 第9-24页 |
1.1 芋螺生物学特性 | 第9-10页 |
1.2 芋螺毒素的命名及分类 | 第10页 |
1.3 芋螺毒素的药理学活性 | 第10-24页 |
1.3.1 作用于配体门控离子通道的芋螺毒素 | 第11-17页 |
1.3.2 作用于电压门控离子通道的芋螺毒素 | 第17-24页 |
2 疼痛 | 第24-32页 |
2.1 疼痛概述 | 第24页 |
2.2 大鼠疼痛模型概述 | 第24-28页 |
2.2.1 物理刺激法 | 第25-26页 |
2.2.2 化学刺激法 | 第26-28页 |
2.3 神经病理性痛模型 | 第28-32页 |
2.3.1 大鼠坐骨神经分支选择性损伤型神经病理痛模型(SNI)的建立 | 第29页 |
2.3.2 大鼠坐骨神经慢性挤压伤病理性痛模型(CCI)的建立 | 第29页 |
2.3.3 大鼠脊神经结扎模型的(SNL)建立 | 第29-30页 |
2.3.4 大鼠骨癌疼痛模型的建立 | 第30-32页 |
3 前景和应用 | 第32-34页 |
4 本研究的目的意义 | 第34-35页 |
5 技术路线 | 第35-36页 |
第二章 材料与方法 | 第36-46页 |
1 动物实验 | 第36-42页 |
1.1 实验材料 | 第36-37页 |
1.1.1 实验动物 | 第36页 |
1.1.2 药品与试剂 | 第36-37页 |
1.1.3 仪器设备 | 第37页 |
1.2 实验方法 | 第37-42页 |
1.2.1 给药途径 | 第37-38页 |
1.2.2 芋螺毒素活性药物筛选 | 第38页 |
1.2.3 镇痛药筛选方法 | 第38-41页 |
1.2.4 统计方法 | 第41-42页 |
2 电生理实验 | 第42-46页 |
2.1 实验材料 | 第42-43页 |
2.1.1 菌种、质粒及培养基 | 第42页 |
2.1.2 实验动物 | 第42页 |
2.1.3 试剂及仪器 | 第42-43页 |
2.2 实验方法 | 第43-46页 |
2.2.1 cRNA的制备 | 第43页 |
2.2.2 受体在非洲爪蟾卵母细胞上表达方法的优化 | 第43-44页 |
2.2.3 Txd1对nAChR α3β4等乙酰胆碱受体的作用 | 第44-46页 |
第三章 结果与分析 | 第46-72页 |
1 金鱼、幼鼠行为学初筛 | 第46-48页 |
1.1 幼鼠中枢给药行为学的初筛结果 | 第46-47页 |
1.2 金鱼肌注给药行为学的初筛结果 | 第47-48页 |
2 Txd1镇痛药效学研究 | 第48-66页 |
2.1 侧脑室中枢给药于小鼠的镇痛效果 | 第48-53页 |
2.1.1 热辐射甩尾模型上的镇痛作用 | 第48-50页 |
2.1.2 热板模型上的镇痛作用 | 第50-53页 |
2.2 腹腔给药于小鼠的镇痛效果 | 第53-58页 |
2.2.1 Txd1在热辐射甩尾模型上的镇痛作用 | 第53-55页 |
2.2.2 Txd1在小鼠热板模型上的镇痛作用 | 第55-58页 |
2.3 Txd1在大鼠CCI模型上的镇痛作用 | 第58-66页 |
2.3.1 CCI模型及鞘内置管模型的建立 | 第58页 |
2.3.2 腹腔注射Txd1在大鼠CCI模型上的镇痛作用 | 第58-62页 |
2.3.3 鞘内注射Txd1在大鼠CCI模型上的镇痛作用 | 第62-66页 |
3 电生理实验结果 | 第66-72页 |
3.1 含有α3、β4 nAChR基因的质粒提取 | 第66页 |
3.2 α3、β4质粒的酶切线性化 | 第66-67页 |
3.3 α3、β4乙酰胆碱受体cRNA浓度测定 | 第67-68页 |
3.4 爪蟾卵母细胞分离条件的优化 | 第68-69页 |
3.5 Txd1对α3β4乙酰胆碱受体的作用 | 第69-70页 |
3.6 Txd1与其他乙酰胆碱受体的作用 | 第70-72页 |
第四章 讨论 | 第72-75页 |
1 动物疼痛模型 | 第72-73页 |
2 电生理实验 | 第73-74页 |
3 Txd1是a3p4受体的阻断剂 | 第74-75页 |
第五章 结论 | 第75-76页 |
参考文献 | 第76-82页 |
缩略词用表 | 第82-83页 |
致谢 | 第83-84页 |
作者在读期间科研成果简介 | 第84页 |