创新点摘要 | 第5-6页 |
摘要 | 第6-8页 |
ABSTRACT | 第8-9页 |
第一章 绪论 | 第15-35页 |
1.1 海洋溢油污染对海洋生态系统的影响 | 第15-19页 |
1.1.1 海洋石油污染的来源及污染现状 | 第15-16页 |
1.1.2 石油污染在海洋中的迁移转化过程 | 第16-17页 |
1.1.3 石油污染对环境的危害 | 第17-18页 |
1.1.4 石油污染对生物的危害 | 第18-19页 |
1.2 海洋石油污染的生态环境毒理效应 | 第19-26页 |
1.2.1 石油污染对浮游植物毒性效应研究进展 | 第19-20页 |
1.2.2 石油污染对浮游动物毒性效应的研究进展 | 第20页 |
1.2.3 石油污染对鱼类毒性效应的研究进展 | 第20-21页 |
1.2.4 石油污染对底栖生物毒性效应的研究进展 | 第21页 |
1.2.5 海洋污染的生物标志物研究进展 | 第21-26页 |
1.3 溢油分散剂的应用及其对海洋生态环境的影响 | 第26-31页 |
1.3.1 溢油分散剂的作用原理及使用优点 | 第26-29页 |
1.3.2 溢油分散剂对海洋生态环境的影响 | 第29-31页 |
1.4 研究的目的、内容及技术路线 | 第31-35页 |
1.4.1 研究对象 | 第31-32页 |
1.4.2 研究目标 | 第32-33页 |
1.4.3 研究内容 | 第33-34页 |
1.4.4 技术路线 | 第34-35页 |
第二章 溢油分散剂对燃料油的乳化效率分析 | 第35-47页 |
2.1 实验材料和仪器 | 第35-39页 |
2.1.1 实验油品 | 第35-37页 |
2.1.2 溢油分散剂选择 | 第37-39页 |
2.1.3 实验海水 | 第39页 |
2.1.4 实验仪器 | 第39页 |
2.2 实验方法 | 第39-40页 |
2.2.1 实验油品的配制 | 第39页 |
2.2.2 石油浓度的测定 | 第39-40页 |
2.3 实验结果 | 第40-45页 |
2.3.1 船舶燃料油与水配比对水中油浓度的影响 | 第40页 |
2.3.2 溢油分散剂对燃料油的化学分散效率的影响因素 | 第40-43页 |
2.3.3 实验分散液和乳化液中油浓度的变化 | 第43-45页 |
2.4 讨论 | 第45页 |
2.5 小结 | 第45-47页 |
第三章 溢油分散剂处理燃料油对海胆胚胎发育的影响 | 第47-55页 |
3.1 材料和方法 | 第47-48页 |
3.1.1 材料 | 第47-48页 |
3.1.2 方法 | 第48页 |
3.2 实验结果与分析 | 第48-53页 |
3.3 讨论 | 第53页 |
3.4 小结 | 第53-55页 |
第四章 溢油分散剂处理燃料油对海胆防御系统酶活性影响 | 第55-63页 |
4.1 实验材料和方法 | 第55-56页 |
4.1.1 主要仪器 | 第55页 |
4.1.2 实验方法 | 第55-56页 |
4.2 实验结果 | 第56-60页 |
4.2.1 CAT酶在海胆肠和性腺组织中的变化 | 第56-57页 |
4.2.2 SOD酶在海胆肠和性腺组织中的变化 | 第57-58页 |
4.2.3 GST酶在海胆肠和性腺组织中的变化 | 第58-59页 |
4.2.4 GPx酶在海胆肠和性腺组织中的变化 | 第59-60页 |
4.3 讨论 | 第60-62页 |
4.3.1 石油烃对酶活性的诱导作用 | 第60页 |
4.3.2 石油烃对酶的先诱导后抑制现象 | 第60-61页 |
4.3.3 4种酶对石油烃污染的敏感程度比较 | 第61-62页 |
4.4 小结 | 第62-63页 |
第五章 溢油分散剂处理燃料油对海胆的DNA损伤 | 第63-78页 |
5.1 实验原理 | 第63-64页 |
5.2 材料和方法 | 第64-67页 |
5.2.1 实验材料 | 第64-65页 |
5.2.2 实验方法 | 第65-67页 |
5.3 实验结果 | 第67-76页 |
5.3.1 表观中毒症状 | 第67-68页 |
5.3.2 不同时间内海胆性腺组织DNA损伤情况 | 第68-69页 |
5.3.3 不同时间内海胆肠组织DNA损伤情况 | 第69-70页 |
5.3.4 不同时间、不同浓度分散液和乳化液对海胆的肠细胞的DNA损伤的影响 | 第70页 |
5.3.5 不同时间、不同浓度分散液和乳化液对海胆肠细胞DNA损伤的影响 | 第70-76页 |
5.4 讨论 | 第76页 |
5.5 小结 | 第76-78页 |
第六章 溢油分散剂处理燃料油对海胆基因突变程度的影响 | 第78-93页 |
6.1 材料和方法 | 第78-83页 |
6.1.1 主要材料 | 第78-79页 |
6.1.2 海胆不同组织DNA提取率比较 | 第79-80页 |
6.1.3 靶基因及引物筛选 | 第80-83页 |
6.1.4 聚丙烯凝胶电泳条件优化 | 第83页 |
6.2 实验结果与分析 | 第83-90页 |
6.2.1 DNA提取结果比较 | 第83-85页 |
6.2.2 聚丙烯凝胶浓度优化 | 第85-86页 |
6.2.3 引物筛选 | 第86页 |
6.2.4 PCR-SSCP的检测 | 第86-88页 |
6.2.5 多态性的测序检测 | 第88-89页 |
6.2.6 海胆基因突变率分析 | 第89-90页 |
6.3 讨论 | 第90-91页 |
6.4 小结 | 第91-93页 |
第七章 溢油分散剂处理燃料油对海胆组织DNA甲基化的分析 | 第93-102页 |
7.1 材料 | 第94-95页 |
7.1.1 实验材料 | 第94页 |
7.1.2 检测系统原理及方法 | 第94-95页 |
7.2 实验方法 | 第95-96页 |
7.2.1 暴露方法 | 第95页 |
7.2.2 样品处理方法 | 第95页 |
7.2.3 数据处理方法 | 第95-96页 |
7.3 实验结果 | 第96-100页 |
7.3.1 标准曲线的绘制 | 第96-97页 |
7.3.2 甲基化水平结果 | 第97-99页 |
7.3.3 甲基化水平和暴露时间的关系 | 第99-100页 |
7.4 讨论 | 第100-101页 |
7.5 小结 | 第101-102页 |
第八章 溢油分散剂对多环芳烃生物富集的影响 | 第102-120页 |
8.1 实验原理 | 第102-104页 |
8.2 实验方法 | 第104-105页 |
8.2.1 实验样品前处理 | 第104页 |
8.2.2 气相质谱条件 | 第104页 |
8.2.3 数据处理方法 | 第104-105页 |
8.3 实验结果 | 第105-117页 |
8.3.1 标准曲线的建立 | 第105-108页 |
8.3.2 分散液和乳化液水溶组分中的多环芳烃含量变化 | 第108-110页 |
8.3.3 分散液和乳化液中多环芳烃含量 | 第110页 |
8.3.4 分散液和乳化液中海胆组织总多环芳烃含量随暴露时间的变化 | 第110-112页 |
8.3.5 分散液和乳化液中总多环芳烃的生物富集 | 第112-113页 |
8.3.6 分散液中主要多环芳烃的生物富集 | 第113-115页 |
8.3.7 乳化液中主要多环芳烃的生物富集 | 第115-117页 |
8.4 讨论 | 第117-118页 |
8.5 小结 | 第118-120页 |
第九章 总结与展望 | 第120-123页 |
9.1 全文结论 | 第120-122页 |
9.2 展望 | 第122-123页 |
参考文献 | 第123-135页 |
攻读学位期间公开发表论文 | 第135-136页 |
致谢 | 第136-137页 |
作者简介 | 第137页 |