中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
缩略语/符号说明 | 第10-11页 |
前言 | 第11-17页 |
研究现状、成果 | 第11-15页 |
研究目的、方法 | 第15-17页 |
一、白藜芦醇对肾癌 786-O细胞的影响 | 第17-34页 |
1.1 对象和方法 | 第17-26页 |
1.1.1 细胞系 | 第17页 |
1.1.2 常规试剂和耗材 | 第17-18页 |
1.1.3 实验用抗体 | 第18页 |
1.1.4 实验所需主要试剂以及主要溶液的配制 | 第18-21页 |
1.1.5 主要仪器设备 | 第21页 |
1.1.6 实验方法 | 第21-26页 |
1.2 结果 | 第26-31页 |
1.2.1 CCK-8 法检测RSV对 786-O细胞增殖的影响 | 第26-27页 |
1.2.2 白藜芦醇对 786-O细胞形态学的影响 | 第27-28页 |
1.2.3 细胞划痕实验检测白藜芦醇对 786-O细胞迁移能力的影响 | 第28-29页 |
1.2.4 Transwell实验检测白藜芦醇对 786-O细胞侵袭能力的影响 | 第29-30页 |
1.2.5 流式细胞术检测白藜芦醇对 786-O细胞凋亡的影响 | 第30页 |
1.2.6 白藜芦醇对 786-O细胞凋亡相关蛋白Bax表达的影响 | 第30-31页 |
1.3 讨论 | 第31-33页 |
1.4 小结 | 第33-34页 |
二、白藜芦醇对肾癌 786-O细胞作用机制的探讨 | 第34-50页 |
2.1 对象和方法 | 第34-41页 |
2.1.1 组织以及细胞系 | 第34页 |
2.1.2 常规试剂和耗材 | 第34-35页 |
2.1.3 实验用抗体 | 第35页 |
2.1.4 实验所需主要试剂以及主要溶液的配制 | 第35-38页 |
2.1.5 主要仪器设备 | 第38页 |
2.1.6 实验方法 | 第38-41页 |
2.2 结果 | 第41-46页 |
2.2.1 肾癌组织与癌旁正常组织中NLRP3的蛋白表达水平 | 第41-42页 |
2.2.2 LPS和ATP共处理 786-O细胞引发炎症模型 | 第42-43页 |
2.2.3 白藜芦醇对 786-O细胞炎症模型中相关分子表达水平的影响 | 第43-44页 |
2.2.4 白藜芦醇对 786-O细胞炎症模型Sirt1蛋白表达水平的影响 | 第44页 |
2.2.5 沉默Sirt1基因后白藜芦醇对 786-O炎症模型NLRP3蛋白表达水平的影响 | 第44-46页 |
2.3 讨论 | 第46-49页 |
2.4 小结 | 第49-50页 |
结论 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-59页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第59-60页 |
综述 NLRP3炎症小体与肿瘤发生关系的研究进展 | 第60-67页 |
综述参考文献 | 第63-67页 |
致谢 | 第67-68页 |
个人简历 | 第68页 |