| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-27页 |
| 1.1 概述 | 第13页 |
| 1.2 酶催化法 | 第13-14页 |
| 1.3 酶催化法合成天然香料的优点 | 第14页 |
| 1.4 手性化合物及其作用 | 第14-16页 |
| 1.5 酶催化法制备手性化合物 | 第16页 |
| 1.6 几种测定酶活的方法 | 第16-20页 |
| 1.6.1 比色法 | 第17页 |
| 1.6.2 量气法 | 第17页 |
| 1.6.3 滴定法 | 第17-18页 |
| 1.6.4 分光光度法 | 第18页 |
| 1.6.5 放射测量法 | 第18-19页 |
| 1.6.6 酶偶联法 | 第19页 |
| 1.6.7 高效液相色谱法 | 第19-20页 |
| 1.7 苯乙酮、肉桂酸及手性1-苯乙醇理化性质及其用途 | 第20-22页 |
| 1.7.1 苯乙酮、肉桂酸及手性1-苯乙醇理化性质 | 第20-21页 |
| 1.7.2 苯乙酮、肉桂酸及手性1-苯乙醇的用途 | 第21-22页 |
| 1.8 肉桂酸和苯乙酮分析方法研究进展 | 第22-23页 |
| 1.9 拆分1-苯乙醇分析方法研究进展 | 第23-24页 |
| 1.10 研究背景、意义及研究内容 | 第24-27页 |
| 1.10.1 立题的背景和意义 | 第24-25页 |
| 1.10.2 研究内容 | 第25-27页 |
| 第二章 Mucor sp.JX23产肉桂酸降解酶和JX13产(S)-1-苯乙醇氧化酶酶活测定方法的建立 | 第27-42页 |
| 2.1 引言 | 第27-28页 |
| 2.2 主要试剂和仪器 | 第28-29页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第28页 |
| 2.2.2 仪器 | 第28-29页 |
| 2.3 蛋白质定量方法的建立 | 第29-31页 |
| 2.3.1 主要试剂的配制 | 第29页 |
| 2.3.2 检测波长的选择 | 第29-30页 |
| 2.3.3 标准曲线的绘制 | 第30-31页 |
| 2.4 Mucor sp.JX23产肉桂酸降解酶酶活测定方法的建立 | 第31-35页 |
| 2.4.1 实验方法 | 第31-32页 |
| 2.4.2 结果与讨论 | 第32-35页 |
| 2.5 (S)-1-苯乙醇氧化酶酶活测定方法的建立 | 第35-41页 |
| 2.5.1 实验方法 | 第35-36页 |
| 2.5.2 结果与讨论 | 第36-41页 |
| 2.6 本章小结 | 第41-42页 |
| 第三章 Mucor sp.JX23产肉桂酸降解酶发酵条件的优化 | 第42-50页 |
| 3.1 引言 | 第42页 |
| 3.2 实验试剂与仪器 | 第42-45页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第42-43页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第43-44页 |
| 3.2.3 菌株来源 | 第44页 |
| 3.2.4 培养基的配制 | 第44页 |
| 3.2.5 营养液的配制 | 第44页 |
| 3.2.6 粗酶液的制取 | 第44页 |
| 3.2.7 粗酶液酶活的测定 | 第44-45页 |
| 3.2.8 数据处理方法 | 第45页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第45-49页 |
| 3.3.1 碳源对产酶的影响 | 第45页 |
| 3.3.2 氮源对产酶的影响 | 第45-46页 |
| 3.3.3 培养基初始pH对产酶的影响 | 第46-47页 |
| 3.3.4 发酵时间对产酶的影响 | 第47-48页 |
| 3.3.5 瓶装量对产酶的影响 | 第48页 |
| 3.3.6 单因素优化前后Mucor sp.JX23产肉桂酸降解酶情况的比较 | 第48-49页 |
| 3.4 本章小结 | 第49-50页 |
| 第四章 肉桂酸降解酶酶学性质研究 | 第50-57页 |
| 4.1 引言 | 第50页 |
| 4.2 实验试剂与仪器 | 第50-51页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第50-51页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第51页 |
| 4.3 实验方法 | 第51-52页 |
| 4.3.1 粗酶液的制取 | 第51页 |
| 4.3.2 粗酶液酶活的测定 | 第51页 |
| 4.3.3 酶的最适pH | 第51-52页 |
| 4.3.4 酶的最适温度 | 第52页 |
| 4.3.5 酶的pH稳定性 | 第52页 |
| 4.3.6 酶的温度稳定性 | 第52页 |
| 4.3.7 肉桂酸降解酶的动力学性质研究 | 第52页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第52-56页 |
| 4.4.1 肉桂酸降解酶的最适pH | 第52-53页 |
| 4.4.2 肉桂酸降解酶的最适温度 | 第53-54页 |
| 4.4.3 肉桂酸降解酶的pH稳定性 | 第54页 |
| 4.4.4 肉桂酸降解酶的温度稳定性 | 第54-55页 |
| 4.4.5 肉桂酸降解酶的动力学性质研究 | 第55-56页 |
| 4.5 本章小结 | 第56-57页 |
| 第五章 JX13产(S)-1-苯乙醇氧化酶发酵条件的优化 | 第57-64页 |
| 5.1 引言 | 第57页 |
| 5.2 实验试剂与仪器 | 第57-59页 |
| 5.2.1 实验试剂 | 第57-58页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第58-59页 |
| 5.2.3 菌株来源 | 第59页 |
| 5.2.4 培养基的配制 | 第59页 |
| 5.2.5 粗酶液的制取 | 第59页 |
| 5.2.6 粗酶液酶活的测定 | 第59页 |
| 5.2.7 数据处理方法 | 第59页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第59-63页 |
| 5.3.1 碳源对产酶的影响 | 第59-60页 |
| 5.3.2 氮源对产酶的影响 | 第60-61页 |
| 5.3.3 培养基初始pH对产酶的影响 | 第61-62页 |
| 5.3.4 发酵时间对产酶的影响 | 第62页 |
| 5.3.5 瓶装量对产酶的影响 | 第62-63页 |
| 5.3.6 单因素优化前后JX13产(S)-1-苯乙醇氧化酶情况的比较 | 第63页 |
| 5.4 本章小结 | 第63-64页 |
| 第六章 (S)-1-苯乙醇氧化酶酶学性质研究 | 第64-71页 |
| 6.1 引言 | 第64页 |
| 6.2 实验试剂与仪器 | 第64-65页 |
| 6.2.1 实验试剂 | 第64-65页 |
| 6.2.2 实验仪器 | 第65页 |
| 6.3 实验方法 | 第65-67页 |
| 6.3.1 粗酶液酶活的测定 | 第65页 |
| 6.3.2 数据处理方法 | 第65-66页 |
| 6.3.3 酶的最适pH | 第66页 |
| 6.3.4 酶的最适温度 | 第66页 |
| 6.3.5 酶的pH稳定性 | 第66页 |
| 6.3.6 酶的温度稳定性 | 第66页 |
| 6.3.7 (S)-1-苯乙醇氧化酶的动力学性质研究 | 第66-67页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第67-70页 |
| 6.4.1 酶的最适pH | 第67页 |
| 6.4.2 酶的最适温度 | 第67-68页 |
| 6.4.3 酶的pH稳定性 | 第68-69页 |
| 6.4.4 酶的温度稳定性 | 第69页 |
| 6.4.5 (S)-1-苯乙醇氧化酶的动力学性质研究 | 第69-70页 |
| 6.5 本章小结 | 第70-71页 |
| 第七章 结论与展望 | 第71-73页 |
| 7.1 结论 | 第71-72页 |
| 7.2 展望 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第80页 |
