| 摘要 | 第10-13页 |
| Abstract | 第13-16页 |
| 第一章 中药有效成分现代提取技术研究进展 | 第17-49页 |
| 1.1 中药有效成分的分类 | 第18页 |
| 1.2 中药有效成分的提取技术 | 第18-36页 |
| 1.2.1 中药有效成分提取的一般原则 | 第18-19页 |
| 1.2.2中药有效成分的传统提取技术[6, 7] | 第19页 |
| 1.2.3 超声波提取技术 | 第19-22页 |
| 1.2.4 微波辅助提取技术 | 第22-25页 |
| 1.2.5 固相微萃取技术 | 第25-29页 |
| 1.2.6 酶法提取技术 | 第29-30页 |
| 1.2.7 加速溶剂提取技术 | 第30-32页 |
| 1.2.8 超临界流体提取技术 | 第32-35页 |
| 1.2.9 红外辅助提取技术 | 第35-36页 |
| 1.3 提取技术展望 | 第36-37页 |
| 1.3.1 提取理论的研究 | 第36页 |
| 1.3.2 提取技术联用 | 第36页 |
| 1.3.3 加强新技术应用于工业化生产的研究 | 第36-37页 |
| 1.4 本文研究的主要内容及意义 | 第37-38页 |
| 1.5 参考文献 | 第38-49页 |
| 第二章 红外辅助一般溶剂提取-HPLC法测定槐米及厚朴中的活性成分 | 第49-86页 |
| 第一节 红外辅助一般溶剂提取-HPLC法测定槐米中的芦丁 | 第49-65页 |
| 2.1 引言 | 第49-50页 |
| 2.2 实验部分 | 第50-54页 |
| 2.2.1 材料 | 第50页 |
| 2.2.2 芦丁提取物的制备 | 第50-51页 |
| 2.2.3 芦丁的HPLC测定 | 第51页 |
| 2.2.4 HPLC-ES 卜MS 条件 | 第51-52页 |
| 2.2.5 试验设计 | 第52-54页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第54-62页 |
| 2.3.1 单因素试验 | 第54-56页 |
| 2.3.2 预测模型和统计分析 | 第56-58页 |
| 2.3.3 响应面图和等局线图 | 第58-59页 |
| 2.3.4 高效液相色谱方法学验证 | 第59-62页 |
| 2.3.5 提取工艺参数的优化和模型的验证 | 第62页 |
| 2.4 本节小结 | 第62页 |
| 2.5 参考文献 | 第62-65页 |
| 第二节 红外辅助一般溶剂提取-HPLC法测定厚朴中的和厚朴酚及厚朴酚 | 第65-86页 |
| 2.1 引言 | 第65页 |
| 2.2 实验部分 | 第65-70页 |
| 2.2.1 材料 | 第65-66页 |
| 2.2.2 厚朴提取物的制备 | 第66页 |
| 2.2.3 HPLC-DAD条件 | 第66-68页 |
| 2.2.4 HPLC-ESI-MS条件 | 第68页 |
| 2.2.5 试验设计 | 第68-70页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第70-83页 |
| 2.3.1 单因素试验 | 第70-73页 |
| 2.3.2 预测模型和统计分析 | 第73-75页 |
| 2.3.3 响应面图和等高线图 | 第75-78页 |
| 2.3.4 高效液相色谱方法学验证 | 第78-83页 |
| 2.3.5 提取工艺参数的优化和模型的验证 | 第83页 |
| 2.4 本节小结 | 第83-84页 |
| 2.5 第二章总结 | 第84页 |
| 2.6 参考文献 | 第84-86页 |
| 第三章 红外辅助非离子型表面活性剂提取-HPLC法测定胡黄连中的胡黄连苷 | 第86-102页 |
| 3.1 引言 | 第86-87页 |
| 3.2 实验部分 | 第87-88页 |
| 3.2.1 材料和试剂 | 第87页 |
| 3.2.2 胡黄连苷的红外辅助胶束萃取 | 第87-88页 |
| 3.2.3 胡黄连苷的浊点萃取及浓缩 | 第88页 |
| 3.2.4 HPLC分析 | 第88页 |
| 3.2.5 统计分析 | 第88页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第88-98页 |
| 3.3.1 提取条件的优化 | 第88-91页 |
| 3.3.2 高效液相色谱方法学验证 | 第91-95页 |
| 3.3.3 Genapol X-080与常规提取溶剂提取率的比较 | 第95-96页 |
| 3.3.4 红外辅助提取与其他提取方法的比较 | 第96页 |
| 3.3.5 胡黄连昔的油点萃取及浓缩 | 第96-98页 |
| 3.4 第三章总结 | 第98页 |
| 3.5 参考文献 | 第98-102页 |
| 第四章 红外辅助无溶剂提取-顶空固相微萃取/GC-QMS法对槐米及槐角中的挥发性成分进行定性分析 | 第102-122页 |
| 4.1 引言 | 第102-103页 |
| 4.2 实验部分 | 第103-106页 |
| 4.2.1 材料 | 第103页 |
| 4.2.2 IRD-HS-SPME萃取 | 第103-104页 |
| 4.2.3 GC-QMS条件 | 第104-105页 |
| 4.2.4 定性分析 | 第105页 |
| 4.2.5 IRD-SPME的精密度 | 第105页 |
| 4.2.6 通过传统的HS-SPME对槐米中的挥发油进行定性分析 | 第105-106页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第106-117页 |
| 4.3.1 IRD-SPME参数的优化 | 第106-110页 |
| 4.3.2 IRD-HS-SPME方法的精密度 | 第110页 |
| 4.3.3 IRD-HS-SPME和传统HS-SPME对槐米中挥发油定性分析的比较 | 第110-112页 |
| 4.3.4 通过IRD-HS-SPME对槐米和槐角中挥发性成分进行定性比较分析 | 第112-117页 |
| 4.4 第四章总结 | 第117-118页 |
| 4.5 参考文献 | 第118-122页 |
| 第五章 红外加速酶辅助提取-HPLC法测定蛇床子中的蛇床子素和欧前胡素 | 第122-140页 |
| 5.1 引言 | 第122-123页 |
| 5.2 实验部分 | 第123-127页 |
| 5.2.1 材料 | 第123-124页 |
| 5.2.2 红外辅助酶解预处理系统 | 第124-125页 |
| 5.2.3 红外辅助酶解预处理和超声辅助提取 | 第125页 |
| 5.2.4 HPLC-DAD条件 | 第125-126页 |
| 5.2.5 HPLC-ESI-MS条件 | 第126-127页 |
| 5.2.6 统计分析 | 第127页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第127-136页 |
| 5.3.1 酶种类的选择 | 第127-128页 |
| 5.3.2 酶浓度的影响 | 第128页 |
| 5.3.3 酶解时间的影响 | 第128-129页 |
| 5.3.4 酶解温度的影响 | 第129-130页 |
| 5.3.5 果胶酶溶液pH值的影响 | 第130页 |
| 5.3.6 高效液相色谱方法学验证 | 第130-135页 |
| 5.3.7 不同预处理及提取方法的比较 | 第135-136页 |
| 5.4 第五章总结 | 第136-137页 |
| 5.5 参考文献 | 第137-140页 |
| 全文总结 | 第140-141页 |
| 本文创新点 | 第141-142页 |
| 展望 | 第142-143页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文 | 第143-144页 |
| 致谢 | 第144-145页 |
