| 致谢 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 缩略词 | 第12-18页 |
| 绪论 | 第18-20页 |
| 1 第一章 大鼠脊髓损伤后局部微环境的炎症因子程序性变化的研究 | 第20-26页 |
| 1.1 引言 | 第20页 |
| 1.2 实验试剂与仪器 | 第20-21页 |
| 1.2.1 材料和试剂 | 第20页 |
| 1.2.2 实验仪器及耗材 | 第20-21页 |
| 1.2.3 实验动物 | 第21页 |
| 1.3 实验方法 | 第21-22页 |
| 1.3.1 脊髓损伤模型 | 第21页 |
| 1.3.1.1 动物分组 | 第21页 |
| 1.3.1.2 脊髓损伤模型的建立 | 第21页 |
| 1.3.1.3 观察指标 | 第21页 |
| 1.3.2 蛋白样本准备 | 第21-22页 |
| 1.3.3 多因子免疫测定 | 第22页 |
| 1.4 实验结果 | 第22-24页 |
| 1.4.1 大鼠右半切脊髓损伤模型的成功建立 | 第22-23页 |
| 1.4.2 脊髓损伤后不同炎症因子的水平有不同的程序性变化 | 第23-24页 |
| 1.5 讨论 | 第24-26页 |
| 2 第二章 夫拉平度调节星形胶质细胞细胞增殖、迁移和炎症因子合成的研究 | 第26-38页 |
| 2.1 引言 | 第26页 |
| 2.2 实验试剂与仪器 | 第26-28页 |
| 2.2.1 材料和试剂 | 第26-27页 |
| 2.2.2 实验仪器及耗材 | 第27-28页 |
| 2.2.3 相关试剂配制 | 第28页 |
| 2.2.3.1 星形胶质细胞培养液 | 第28页 |
| 2.2.3.2 神经元培养液 | 第28页 |
| 2.3 实验方法 | 第28-31页 |
| 2.3.1 大鼠星形胶质细胞的原代培养 | 第28-29页 |
| 2.3.2 大鼠神经元的原代培养 | 第29页 |
| 2.3.3 细胞活性检测 | 第29页 |
| 2.3.4 星形胶质细胞划痕愈合试验 | 第29页 |
| 2.3.5 细胞周期流式 | 第29页 |
| 2.3.6 提取RNA | 第29-30页 |
| 2.3.7 逆转录合成cDNA | 第30页 |
| 2.3.8 实时荧光定量PCR (Real time PCR) | 第30-31页 |
| 2.3.9 其余方法同第一章 | 第31页 |
| 2.4 实验结果 | 第31-36页 |
| 2.4.1 夫拉平度抑制星形胶质细胞的炎症因子合成、增殖和划痕愈合 | 第31-34页 |
| 2.4.1.1 夫拉平度抑制星形胶质细胞的增殖 | 第31-32页 |
| 2.4.1.2 夫拉平度影响大鼠星形胶质细胞的细胞周期 | 第32-33页 |
| 2.4.1.3 夫拉平度抑制星形胶质细胞的炎症因子合成 | 第33页 |
| 2.4.1.4 夫拉平度抑制星形胶质细胞的划痕愈合 | 第33-34页 |
| 2.4.2 夫拉平度不影响神经元的存活 | 第34-36页 |
| 2.4.2.1 合适浓度的夫拉平度不影响大鼠神经元的存活 | 第34-35页 |
| 2.4.2.2 夫拉平度抑制神经元细胞凋亡蛋白酶3的表达,促进神经原素1的表达 | 第35页 |
| 2.4.2.3 夫拉平度影响大鼠神经元的细胞周期 | 第35-36页 |
| 2.5 讨论 | 第36-38页 |
| 3 第三章 夫拉平度微球促进脊髓损伤修复的研究 | 第38-54页 |
| 3.1 引言 | 第38页 |
| 3.2 实验试剂与仪器 | 第38-40页 |
| 3.2.1 材料和试剂 | 第38-39页 |
| 3.2.2 实验仪器及材料 | 第39页 |
| 3.2.3 实验动物 | 第39页 |
| 3.2.4 相关溶液的配制 | 第39-40页 |
| 3.2.4.1 伊红染液 | 第39页 |
| 3.2.4.2 4%多聚甲醛 | 第39-40页 |
| 3.2.4.3 2.5%戊二醛溶液 | 第40页 |
| 3.2.4.4 其余同前一章 | 第40页 |
| 3.3 实验方法 | 第40-43页 |
| 3.3.1 PLGA微球的合成 | 第40页 |
| 3.3.2 扫描电镜样本制备 | 第40页 |
| 3.3.3 夫拉平度微球药物释放的测定 | 第40-41页 |
| 3.3.4 夫拉平度微球的局部施用 | 第41页 |
| 3.3.5 冰冻切片及H&E染色 | 第41页 |
| 3.3.6 组织免疫荧光 | 第41-42页 |
| 3.3.7 皮质脊髓束追踪 | 第42页 |
| 3.3.8 透明脊髓技术 | 第42页 |
| 3.3.9 BBB评分 | 第42页 |
| 3.3.10 网格试验 | 第42-43页 |
| 3.4 实验结果 | 第43-52页 |
| 3.4.1 夫拉平度PLGA微球的合成和检测 | 第43-45页 |
| 3.4.1.1 PLGA微球的形态 | 第43页 |
| 3.4.1.2 夫拉平度微球的药物释放 | 第43-44页 |
| 3.4.1.3 PLGA微球不影响大鼠星形胶质细胞的增殖 | 第44页 |
| 3.4.1.4 PLGA微球不影响大鼠神经元的存活 | 第44-45页 |
| 3.4.2 夫拉平度微球促进脊髓损伤后脊髓结构的恢复 | 第45-47页 |
| 3.4.2.1 夫拉平度微球提高脊髓大体结构的完整性 | 第45-46页 |
| 3.4.2.2 夫拉平度微球提高神经存活,减少星形胶质增生 | 第46页 |
| 3.4.2.3 夫拉平度微球促进神经传导的恢复,抑制空洞形成 | 第46-47页 |
| 3.4.3 夫拉平度微球调节脊髓损伤后的炎症 | 第47-51页 |
| 3.4.3.1 夫拉平度微球影响损伤局部的细胞周期 | 第47-48页 |
| 3.4.3.2 夫拉平度微球提高GM-CSF的水平,降低IP-10的水平 | 第48-49页 |
| 3.4.3.3 夫拉平度微球在损伤局部作用于不同细胞类型 | 第49-50页 |
| 3.4.3.4 夫拉平度微球抑制星形胶质细胞的炎症因子合成 | 第50-51页 |
| 3.4.4 夫拉平度微球促进脊髓损伤后的功能恢复 | 第51-52页 |
| 3.5 讨论 | 第52-54页 |
| 4 总结 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-64页 |
| 综述 | 第64-91页 |
| 参考文献 | 第77-91页 |
| 作者简历 | 第91-92页 |
