| 摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-6页 |
| 符号说明 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-12页 |
| 第一部分 文献综述 | 第12-23页 |
| 1 骨骼肌概述 | 第12-16页 |
| 1.1 骨骼肌的组织学结构与功能 | 第12页 |
| 1.2 骨骼肌损伤 | 第12-14页 |
| 1.2.1 骨骼肌损伤概念 | 第12页 |
| 1.2.2 骨骼肌损伤分类 | 第12-13页 |
| 1.2.3 骨骼肌损伤机制 | 第13-14页 |
| 1.2.3.1 肌细胞机械损伤 | 第13页 |
| 1.2.3.2 能量代谢紊乱 | 第13页 |
| 1.2.3.3 电解质失衡 | 第13-14页 |
| 1.2.3.4 自由基损伤 | 第14页 |
| 1.3 骨骼肌损伤动物模型的建立与评价 | 第14-15页 |
| 1.3.1 骨骼肌损伤动物模型的建立 | 第14页 |
| 1.3.1.1 一次性力竭运动模型 | 第14页 |
| 1.3.1.2 钝挫伤模型 | 第14页 |
| 1.3.2 骨骼肌损伤动物模型的评价 | 第14-15页 |
| 1.3.2.1 安静常氧状态下骨骼肌的超微结构 | 第15页 |
| 1.3.2.2 一次性力竭运动对骨骼肌超微结构的影响 | 第15页 |
| 1.3.2.3 钝挫伤对骨骼肌超微结构的影响 | 第15页 |
| 1.4 骨骼肌损伤的修复 | 第15-16页 |
| 2 MG53、PTRF及其修复骨骼肌细胞膜损伤的机制 | 第16-18页 |
| 2.1 细胞膜修复蛋白 | 第16-17页 |
| 2.1.1 MG53蛋白 | 第16-17页 |
| 2.1.2 聚合酶Ⅰ和转录释放因子 | 第17页 |
| 2.2 细胞膜损伤修复机制 | 第17-18页 |
| 2.2.1 MG53与肌细胞膜修复 | 第17-18页 |
| 2.2.2 PTRF与细胞膜修复 | 第18页 |
| 3 肌卫星细胞与骨骼肌损伤修复 | 第18-22页 |
| 3.1 肌卫星细胞概述 | 第18-20页 |
| 3.1.1 肌卫星细胞的发现 | 第19页 |
| 3.1.2 肌卫星细胞的自我更新 | 第19页 |
| 3.1.3 肌卫星细胞的特异性标记Pax7 | 第19-20页 |
| 3.1.4 肌卫星细胞与骨骼肌损伤修复 | 第20页 |
| 3.2 Wnt/β-catenin信号通路与肌卫星细胞 | 第20-22页 |
| 3.2.1 Wnt/β-catenin信号通路 | 第20-21页 |
| 3.2.2 Wnt/β-catenin信号通路与卫星细胞自我更新 | 第21-22页 |
| 4 研究展望 | 第22-23页 |
| 第二部分 实验部分 | 第23-47页 |
| 1 材料与方法 | 第24-32页 |
| 1.1 实验动物与模型 | 第24-25页 |
| 1.1.1 实验动物和喂养 | 第24页 |
| 1.1.2 实验动物分组 | 第24页 |
| 1.1.3 动物模型的建立 | 第24-25页 |
| 1.1.3.1 一次性力竭运动模型 | 第24页 |
| 1.1.3.2 钝挫伤模型 | 第24-25页 |
| 1.2 样本取材与处理 | 第25页 |
| 1.2.1 样本取材 | 第25页 |
| 1.2.2 组织样本制备 | 第25页 |
| 1.3 指标测定与方法 | 第25-30页 |
| 1.3.1 蛋白含量测定 | 第25-26页 |
| 1.3.1.1 检测原理 | 第25-26页 |
| 1.3.1.2 检测步骤 | 第26页 |
| 1.3.2 酶联免疫法 | 第26-27页 |
| 1.3.2.1 检测原理 | 第26页 |
| 1.3.2.2 检测方法与步骤 | 第26-27页 |
| 1.3.2.3 结果计算 | 第27页 |
| 1.3.3 骨骼肌组织总RNA的提取 | 第27-28页 |
| 1.3.3.1 准备工作 | 第27页 |
| 1.3.3.2 提取总RNA | 第27-28页 |
| 1.3.3.3 RNA质量和浓度检测 | 第28页 |
| 1.3.4 RNA反转录 | 第28-29页 |
| 1.3.5 实时荧光定量(Real-Time PCR) | 第29-30页 |
| 1.3.5.1 引物设计 | 第29页 |
| 1.3.5.2 实时荧光定量反应体系 | 第29页 |
| 1.3.5.3 实时荧光定量反应条件 | 第29-30页 |
| 1.3.5.4 实时荧光定量结果的计算 | 第30页 |
| 1.3.5.5 荧光定量PCR溶解曲线 | 第30页 |
| 1.4 实验仪器 | 第30-31页 |
| 1.5 实验试剂 | 第31-32页 |
| 1.6 统计学处理 | 第32页 |
| 2 实验结果 | 第32-41页 |
| 2.1 力竭运动和钝挫伤各组大鼠骨骼肌组织和血清PTRF含量的比较 | 第32-33页 |
| 2.2 力竭运动和钝挫伤各组大鼠骨骼肌组织PTRF mRNA表达水平的比较 | 第33-34页 |
| 2.3 力竭运动和钝挫伤各组大鼠骨骼肌组织和血清MG53含量的比较 | 第34-35页 |
| 2.4 力竭运动和钝挫伤各组大鼠骨骼肌组织MG53 mRNA表达水平的比较 | 第35-37页 |
| 2.5 力竭运动和钝挫伤各组大鼠骨骼肌组织和血清Pax7含量的比较 | 第37-38页 |
| 2.6 力竭运动和钝挫伤各组大鼠骨骼肌组织Pax7 mRNA表达水平的比较 | 第38-39页 |
| 2.7 力竭运动和钝挫伤各组大鼠骨骼肌组β-catenin mRNA表达水平的比较 | 第39-41页 |
| 3 讨论 | 第41-46页 |
| 3.1 力竭运动和钝挫伤对PTRF的影响 | 第41-42页 |
| 3.2 力竭运动和钝挫伤对MG53的影响 | 第42-43页 |
| 3.3 力竭运动和钝挫伤对Pax7的影响 | 第43-44页 |
| 3.4 力竭运动和钝挫伤对β-catenin的影响 | 第44-46页 |
| 4 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文 | 第55-56页 |
