| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-24页 |
| 1 植物体内的天然免疫系统 | 第12-17页 |
| 1.1 植物的非特异防卫反应 | 第12-13页 |
| 1.2 植物对病原菌的专化抗病性 | 第13-17页 |
| 1.2.1 抗性基因与无毒基因的互作 | 第14页 |
| 1.2.2 病原菌无毒基因 | 第14-15页 |
| 1.2.3 抗病基因 | 第15-16页 |
| 1.2.4 信号的产生和传递 | 第16-17页 |
| 2 植物免疫系统中的信号分子 | 第17-20页 |
| 2.1 水杨酸在植物抗病性中的作用 | 第17-18页 |
| 2.2 茉莉酸在植物抗病性中的作用 | 第18-19页 |
| 2.3 乙烯在植物抗病性中的作用 | 第19-20页 |
| 2.4 抗病信号途径的复杂性 | 第20页 |
| 3 植物抗病相关启动子的研究进展 | 第20-22页 |
| 3.1 植物基因启动子的分类 | 第20-21页 |
| 3.2 病原菌诱导型启动子 | 第21-22页 |
| 4 本研究目的和意义 | 第22-24页 |
| 第二章 水稻蛋白磷酸酶ABI2基因启动子的克隆和功能分析 | 第24-32页 |
| 1 材料与方法 | 第24-26页 |
| 1.1 启动子的克隆和测序 | 第24-25页 |
| 1.2 OsABI2p::GUS表达载体构建 | 第25页 |
| 1.3 农杆菌介导的水稻遗传转化及转基因植株的获得 | 第25页 |
| 1.4 GUS蛋白组织化学染色法检测与活性分析 | 第25页 |
| 1.5 水稻处理方法 | 第25-26页 |
| 2 结果与分析 | 第26-30页 |
| 2.1 启动子的克隆和序列分析 | 第26-28页 |
| 2.2 OsABI2基因启动子器官或组织特异性表达 | 第28-29页 |
| 2.3 T1代转基因植株OsABI2p诱导表达特性 | 第29-30页 |
| 3 讨论 | 第30-32页 |
| 第三章 水稻Xa21启动子的克隆与功能分析 | 第32-39页 |
| 1 材料与方法 | 第32-33页 |
| 1.1 启动子的克隆和测序 | 第32页 |
| 1.2 Xa21的GUS融合表达载体构建 | 第32-33页 |
| 1.3 农杆菌介导的水稻遗传转化及转基因植株的获得 | 第33页 |
| 1.4 GUS蛋白组织化学染色法检测与活性分析 | 第33页 |
| 1.5 水稻处理方法 | 第33页 |
| 2 结果与分析 | 第33-37页 |
| 2.1 启动子的克隆和序列分析 | 第33-35页 |
| 2.2 Xa21基因启动子时空表达特征 | 第35-36页 |
| 2.3 Xa21基因启动子在不同逆境和激素处理下的表达特征 | 第36-37页 |
| 3 讨论 | 第37-39页 |
| 第四章 水稻Xa1基因启动子的克隆及功能分析 | 第39-45页 |
| 1 材料与方法 | 第39-40页 |
| 1.1 启动子的克隆和测序 | 第39页 |
| 1.2 Xa1的GUS融合表达载体构建 | 第39-40页 |
| 1.3 农杆菌介导的水稻遗传转化及转基因植株的获得 | 第40页 |
| 1.4 GUS蛋白组织化学染色法检测与活性分析 | 第40页 |
| 1.5 水稻处理方法 | 第40页 |
| 2 结果与分析 | 第40-44页 |
| 2.1 启动子的克隆和序列分析 | 第40-42页 |
| 2.2 Xa1基因启动子时空表达特征 | 第42-43页 |
| 2.3 Xa1基因启动子在机械损伤和不同激素处理下的表达特征分析 | 第43-44页 |
| 3 讨论 | 第44-45页 |
| 第五章 水稻DRERF1基因启动子的克隆及功能分析 | 第45-50页 |
| 1 材料与方法 | 第45-46页 |
| 1.1 启动子的克隆和测序 | 第45-46页 |
| 1.2 DRERF1的GUS融合表达载体构建 | 第46页 |
| 1.3 农杆菌介导的水稻遗传转化及转基因植株的获得 | 第46页 |
| 1.4 GUS蛋白组织化学染色法检测与活性分析 | 第46页 |
| 1.5 水稻处理方法 | 第46页 |
| 2 结果与分析 | 第46-49页 |
| 2.1 启动子克隆和序列分析 | 第46-48页 |
| 2.2 DRERF1基因启动子的病原菌诱导表达特征分析 | 第48-49页 |
| 3 讨论 | 第49-50页 |
| 第六章 OsPIANK1基因在水稻抗病反应中的功能分析 | 第50-71页 |
| 1 材料与方法 | 第51-55页 |
| 1.1 OsPIANK1启动子不同长度缺失体DNA的获得 | 第51页 |
| 1.2 PIANK1 cDNA的克隆及序列分析 | 第51页 |
| 1.3 载体构建 | 第51-53页 |
| 1.3.1 OsPIANK1启动子不同缺失区段的GUS融合载体构建 | 第51-52页 |
| 1.3.2 OsPIANK1过量表达载体构建 | 第52页 |
| 1.3.3 OsPIANK1与GFP融合蛋白载体构建 | 第52-53页 |
| 1.4 农杆菌介导的遗传转化 | 第53页 |
| 1.5 GUS蛋白组织化学染色法检测与活性分析 | 第53页 |
| 1.6 水稻处理方法 | 第53页 |
| 1.7 亚细胞定位 | 第53页 |
| 1.8 荧光定量PCR | 第53-54页 |
| 1.9 稻瘟病病原菌DNA的定量分析 | 第54-55页 |
| 2 结果与分析 | 第55-68页 |
| 2.1 OsPIANK1启动子及其缺失区段的克隆与分析 | 第55-57页 |
| 2.2 OsPIANK1启动子不同逆境和激素处理下的活性分析 | 第57-59页 |
| 2.3 OsPIANK1启动子不同缺失区段的诱导活性分析 | 第59-61页 |
| 2.4 OsPIANK1 cDNA的克隆与结构分析 | 第61-63页 |
| 2.5 OsPIANK1过量表达载体及PIANK1与GFP融合蛋白载体的构建 | 第63页 |
| 2.6 OsPIANK1亚细胞定位 | 第63-64页 |
| 2.7 OsPIANK1介导水稻对稻瘟病的抗性分析 | 第64页 |
| 2.8 OsPIANK1对不同病程相关基因的影响 | 第64-68页 |
| 3 讨论 | 第68-71页 |
| 参考文献 | 第71-85页 |
| 附录1 缩略词表 | 第85-86页 |
| 附录2 Gateway技术构建启动子与GUS融合表达载体引物 | 第86-87页 |
| 博士在读期间发表论文情况 | 第87-88页 |
| 致谢 | 第88页 |
