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鞘氨醇单胞菌USTB-05降解微囊藻毒素-LR特性及酶学途径研究

摘要第4-6页
Abstract第6-7页
第一章 绪论第12-22页
    1.1 课题研究背景与意义第12-13页
        1.1.1 研究背景第12-13页
        1.1.2 研究意义第13页
    1.2 微囊藻毒素简介第13-15页
        1.2.1 MCs的产生第13-14页
        1.2.2 MCs的结构特点第14-15页
        1.2.3 MCs的毒性第15页
    1.3 碳纳米管材料去除MCs研究进展第15-16页
    1.4 微生物去除MCs研究进展第16-18页
    1.5 酶降解MCs分子机理研究进展第18-19页
    1.6 重组蛋白纯化研究进展第19-20页
    1.7 USTB-05 菌株的简介第20-21页
    1.8 USTB-05 菌降解MCs基因简介第21页
    1.9 研究内容第21-22页
第二章 USTB-05 降解微囊藻毒素特性研究第22-32页
    2.1 实验材料第22-23页
        2.1.1 试剂药品第22-23页
        2.1.2 MC-LR标准品第23页
        2.1.3 菌的来源第23页
        2.1.4 仪器设备第23页
    2.2 实验方法第23-27页
        2.2.1 高效液相色谱仪分析测定条件第23-24页
        2.2.2 MC-LR的定量测定第24页
        2.2.3 菌种培养基及培养条件第24-25页
        2.2.4 MCs提取提纯第25页
        2.2.5 USTB-05 菌降解MC-LR的实验第25页
        2.2.6 USTB-05 菌无细胞提取液提取第25-26页
        2.2.7 USTB-05 菌蛋白浓度测定第26-27页
        2.2.8 不同浓度酶降解MC-LR第27页
        2.2.9 碳纳米管对酶的吸附第27页
        2.2.10 碳纳米管加载USTB-05 酶降解MC-LR第27页
    2.3 实验结果与分析第27-31页
        2.3.1 USTB-05 菌降解MC-LR特性分析第27-28页
        2.3.2 不同浓度USTB-05 粗酶降解MC-LR的效果第28-29页
        2.3.3 不同规格的碳纳米管对蛋白酶的吸附作用第29-30页
        2.3.4 不同规格的碳纳米管加载蛋白酶降解MC-LR效果第30-31页
    2.4 本章小结第31-32页
第三章 降解基因克隆表达与蛋白酶的纯化第32-48页
    3.1 实验材料第32-33页
        3.1.1 试剂药品第32-33页
        3.1.2 菌和载体的来源第33页
        3.1.3 仪器设备第33页
    3.2 实验方法第33-39页
        3.2.1 试剂的配制第33-34页
        3.2.2 引物设计第34页
        3.2.3 PCR扩增第34-35页
        3.2.4 DNA凝胶电泳第35页
        3.2.5 目的片段的回收第35-36页
        3.2.6 PCR产物及质粒双酶切第36页
        3.2.7 重组质粒的构建第36页
        3.2.8 连接产物转化至感受态细胞第36-37页
        3.2.9 重组菌目的蛋白电泳检测第37-38页
        3.2.10 重组菌目的蛋白诱导表达第38-39页
        3.2.11 重组菌扩大培养及目的蛋白纯化第39页
        3.2.12 重组菌蛋白浓度及纯度测定第39页
    3.3 实验结果与分析第39-47页
        3.3.1 目的基因PCR电泳验证第39-41页
        3.3.2 重组菌目的蛋白诱导表达第41-42页
        3.3.3 重组菌目的蛋白纯化第42-45页
        3.3.4 重组菌蛋白浓度及纯度测定第45-47页
    3.4 本章小结第47-48页
第四章 重组菌降解微囊藻毒素特性研究第48-56页
    4.1 实验材料第48页
        4.1.1 实验试剂第48页
        4.1.2 仪器第48页
    4.2 实验方法第48-50页
        4.2.1 菌种培养基及培养条件第48页
        4.2.2 重组菌无细胞提取液提取第48-49页
        4.2.3 菌降解MC-LR实验第49页
        4.2.4 重组菌诱导实验第49-50页
        4.2.5 不同浓度蛋白酶降解MC-LR第50页
        4.2.6 碳纳米管对蛋白酶的吸附实验第50页
        4.2.7 碳纳米管加载蛋白酶降解MC-LR第50页
    4.3 实验结果与分析第50-55页
        4.3.1 重组菌降解MC-LR分析第50-51页
        4.3.2 碳纳米管对重组菌降解MC-LR的影响第51-52页
        4.3.3 诱导剂IPTG对重组菌降解MC-LR的影响第52-53页
        4.3.4 不同浓度重组菌蛋白酶降解MC-LR的效果第53页
        4.3.5 不同规格的碳纳米管对蛋白酶的吸附作用第53-54页
        4.3.6 不同规格的碳纳米管加载蛋白酶降解MC-LR效果第54-55页
    4.4 本章小结第55-56页
第五章 USTB-05 降解微囊藻毒素酶学途径研究第56-63页
    5.1 实验材料第56页
        5.1.1 实验试剂第56页
        5.1.2 仪器第56页
    5.2 实验方法第56-58页
        5.2.1 重组菌A蛋白酶降解MC-LR实验第56页
        5.2.2 重组菌B蛋白酶降解产物A实验第56-57页
        5.2.3 重组菌C蛋白酶降解产物B和产物A实验第57-58页
    5.3 实验结果与分析第58-62页
        5.3.1 重组菌A蛋白酶降解MC-LR分析第58页
        5.3.2 重组菌B蛋白酶催化降解产物A分析第58-59页
        5.3.3 重组菌C蛋白酶催化降解产物B分析第59-60页
        5.3.4 重组菌C蛋白酶催化降解产物A分析第60-61页
        5.3.5 USTB-05 菌降解MC-LR酶学途径讨论第61-62页
    5.4 本章小结第62-63页
第六章 结论与展望第63-65页
    6.1 主要结论第63-64页
    6.2 展望第64-65页
参考文献第65-71页
附录A USTB05A基因序列第71页
附录B USTB05B基因序列第71-73页
附录C USTB05C基因序列第73-75页
致谢第75-76页
攻读学位期间的研究成果第76-77页

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